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두 개의 난자 세포가 융합하여 생존 가능한 배아가 발달할 수 있습니까?

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접합자가 형성되기 위해서는 두 개의 반수체 배우자가 수정 과정에서 감수 분열을 거쳐 융합됩니다. 2개의 난자 세포(또는 2개의 정자 세포)가 모두 반수체이기 때문에 이론적으로 (실험 조작을 통해) 배아를 만드는 것이 가능합니까? 나는 그런 일이 가능하다면 두 개의 난자 세포가 각각 같은 유기체 또는 두 개의 다른 출처에서 나올 수 있다고 추측합니다. 두 난자가 동일한 유기체에서 유래하는 경우 유전적 변이가 없어 돌연변이 대립유전자가 지속되는 것과 같은 부작용이 있습니까?


예, 두 개의 난자에서 접합자를 만드는 것이 가능합니다. 더 복잡한 다른 시나리오도 가능합니다. 이 cbc 기사를 읽고 싶을 수도 있습니다. 두 개의 난자가 같은 유기체에서 나왔다면 아기는 매우 낮은 이형 접합성(근친 교배 우울증과 혈연 문제를 일으키는 동일한 메커니즘)으로 인해 여러 질병에 걸릴 가능성이 매우 높습니다.

미토콘드리아 DNA(mtDNA)가 부족하기 때문에 두 개의 정자에서 접합자를 얻는 것은 불가능할 수 있습니다. 정자에는 약간의 mtDNA가 있지만 일반적으로 전달되지는 않습니다. 실험 설정을 통해 나는 그것이 가능할 것이라고 상상합니다. 또한 정자는 매우 작고 접합자를 시작하는 데 필요한 많은 자원이 부족합니다.


당신은 키메라 현상(단일 유기체의 독특한 유전형, 동물의 경우 두 개의 수정란이 합쳐질 때 발생함)을 설명하고 있습니다. 이 기사는 소량의 태아 세포가 산모의 몸을 통해 이동할 때 임신 중에 "마이크로키메라 현상"이 발생할 수 있음을 시사합니다. 내 첫 번째 링크(Wikipedia 기사)에서 인간과 다른 종의 추가 예를 찾을 수 있지만 여기에 하나가 더 있습니다. 뉴잉글랜드 의학저널 1998년 초:

3.46kg의 아기가 만삭에 질식으로 분만되었습니다. 그는 정상적인 오른쪽 고환과 하강되지 않은 왼쪽 고환을 가졌으며 그 외에는 정상적인 남성 생식기를 가지고 있었습니다. 생후 6개월에 왼쪽 고환이 사타구니 고리에서 만져졌습니다. 생후 15개월의 외과적 탐색에서 비정상적인 생식선과 정관을 포함하는 탈장낭이 발견되었습니다. 이러한 구조는 절제되었습니다. 그들은 조직학적 검사에서 난소가 자궁의 뿔에 부착된 나팔관이 있는 것으로 판명되었습니다. 말초혈액 림프구의 핵형 분석 결과 2개의 세포주, 즉 하나는 46,XX이고 다른 하나는 46,XY였습니다.


배아 줄기 세포는 무엇이며 어떻게 도움이 됩니까?

메소러 교수는 박사 학위를 수료했습니다. 히브리 대학교에서 박사 후 과정을 수행했으며 NIH의 국립 암 연구소에서 박사 후 과정을 수행했습니다. 2007년에 그는 히브리 대학교로 돌아와 현재 유전학과 및 에드먼드와 릴리 뇌 과학 센터(Edmond and Lily Center for Brain Sciences, ELSC)의 "후성 유전학, 줄기 세포 및 뉴런" 연구실을 이끌고 있습니다. Meshorer의 연구는 배아 및 신경 줄기 세포의 염색질 가소성 및 후성 유전적 조절, 재프로그래밍 중, 신경퇴행성 질환의 만능 모델 및 고대 게놈의 후성 유전학("고후성 유전학")에 중점을 둡니다. *[email protected]

젊은 리뷰어

나는 역사와 생물학 책을 읽고, Pokémon 게임과 다른 Nintendo Switch 게임을 하는 것을 좋아합니다.

요나탄

나는 부모님과 함께 텔아비브에 살고 있고, 여동생과 남동생과 함께 살고 있습니다. 개는 없습니다. 나는 고대 역사에서 현대 과학에 이르기까지 새로운 것을 발견하고 멋진 것을 배우는 것을 좋아합니다. 더 나빠지면 농구를 해요.

추상적 인

인간을 포함한 모든 생명체는 세포로 이루어져 있습니다. 신체의 각 조직과 기관에는 특정 작업을 수행하도록 특수화된 세포가 있습니다. 간에는 간 세포가 있고, 뇌에는 뉴런이 있고, 눈에는 빛을 감지하는 세포가 있습니다. 그러나 모든 인간의 삶은 아버지의 정자 세포와 어머니의 난자라는 두 세포의 만남으로 시작됩니다. 수정은 정자 세포가 난자 세포를 만날 때 발생합니다. 수정란 세포는 두 개의 세포로 나뉩니다. 그런 다음 각 세포는 두 개의 추가 세포로 분열하는 식으로 며칠 간의 세포 분열 후 작은 배아가 발달할 때까지 계속됩니다. 초기 단계에서 미세한 배아는 모든 유형의 세포로 발달할 가능성이 있는 세포로 구성됩니다. 과학자들은 연구실에서 이 배아 세포를 키울 수 있었고 배아 줄기 세포(ESC)라는 이름을 붙였습니다. ESC는 실험실에서 장기를 성장시킬 수 있는 가능성과 같이 유망하고 흥미로운 기회를 제공하지만, ESC를 생산하려면 인간 배아가 필요하며, 이는 많은 기술 및 윤리적 문제를 수반합니다. 2007년에 연구자들은 정상 세포를 줄기 세포로 재프로그래밍하여 ESC의 능력을 가진 인간 세포를 생산하는 방법을 발견했습니다. 오늘날 과학자들은 거의 모든 유형의 세포를 거의 모든 다른 유형의 세포로 바꿀 수 있습니다!


과학자들은 실험실에서 모델 배아를 만들어 주요 윤리적 문제를 제기합니다.

호주 연구원들은 중요한 윤리적 문제를 제기하는 세계 최초의 과학적 돌파구에서 성인 팔의 피부 세포에서 "모형" 인간 배아를 만들었습니다.

멜버른 모나시 대학의 연구원들이 실험실에서 만든 모델 배아는 난자나 정자를 사용하지 않고 인간의 삶의 처음 며칠을 복제하도록 재프로그래밍된 일반 세포를 사용합니다.

Monash University에서 개발한 애니메이션으로 인공 배아가 생성되는 과정을 보여줍니다. 크레딧: 모나쉬 대학교

접시에 넣으면 배아가 자궁에 있는 것처럼 모델 배아가 부착되어 발달하기 시작합니다.

그러나 그들은 몇 가지 주요 특징이 결여되어 있고 일반적으로 볼 수 없는 세포를 포함하는 자연 배아와 동일하지 않습니다.

그 결과와 동물 데이터를 기반으로 과학자들은 완전히 발달할 수 있을 것이라고 믿지 않습니다. 이러한 이유로 과학자들은 "인공 배아"라는 꼬리표가 붙는 작업에 격렬하게 저항합니다.

이 발견을 한 모나쉬 팀의 리더인 호세 폴로 교수는 목요일 저널에 "나는 내가 생명을 창조했다고 느끼지 않는다"고 말했다. 자연.

종교 지도자들이 이것을 어떻게 받아들일지는 모르겠습니다.

모나시 대학교 호세 폴로 교수

“기본적으로 우리는 좋은 모델을 만들었습니다. 나는 가능한 모든 증거에 기초하여 그들이 발달의 아주 초기 단계를 모델링할 수 있을 뿐이며 따라서 인간으로 발달할 수 없다고 100퍼센트 확신합니다.”

모델 배아가 실제 배아와 동일한 보호를 받아야 하는지 여부와 같은 작업으로 인해 제기된 주요 윤리적 문제를 알고 있는 연구자들은 지금까지 11일을 초과하여 자라도록 내버려 두지 않았습니다.

그들과 다른 전문가들은 이 새로운 창조물의 상태, 윤리적으로 수행할 수 있는 연구, 그리고 그들이 얼마나 발전하도록 허용할 수 있는지에 대한 커뮤니티 대화가 필요하다고 말합니다.

예를 들어 가톨릭 교회는 생명이 수정에서 시작된다고 생각합니다. 그러나 폴로 교수의 모형 배아는 수정이 필요하지 않습니다.

다른 세포 유형을 강조하는 단백질 염색이 있는 모델 배아. 크레딧: 모나쉬 대학교

폴로 교수는 “종교 지도자들이 솔직히 이것을 어떻게 받아들일지 모르겠다”고 말했다. “우리는 이것이 모델이라는 것을 기억해야 합니다. 그들은 발전 가능성이 없습니다. 그들은 아기를 만들 수 없습니다. 우리는 토론을 해야 합니다. 생물학을 모델링하기 위해 이 모델을 어디까지 사용할 수 있습니까?”

과학자들이 iBlastoid라고 부르는 모델 배아는 인간 발달의 초기 단계를 연구할 수 있는 기회를 제공합니다. 이는 현재 자연 배아 연구에 대한 윤리적 제한으로 인해 어렵습니다.

그들은 불임, 유산, 선천적 기형의 원인과 배아가 때때로 자궁에 착상하지 못하는 이유를 연구하는 데 사용될 수 있습니다.

IVF 전문가는 이 기술에 가장 관심이 있는 사람들입니다.

수요일 모나시 대학교 연구실의 호세 폴로 교수. 크레딧: 제이슨 사우스

제이슨 림니오스(Jason Limnios) 연구원은 “이 연구는 인간 발달의 가장 초기 단계에는 난자가 필요하지 않다는 것과 피부 세포, 소수의 유전자, 적절한 화학적 조건을 사용하여 달성할 수 있다는 두 가지 놀라운 사실을 보여줍니다.”라고 말했습니다. 연구에 참여하지 않은 본드 대학의 재생 의학을 위한 클렘 존스 센터.

폴로 교수의 연구실에서 만든 세포는 배반포와 매우 흡사합니다. 배반포는 정자에 의해 수정된 후 자궁벽에 착상되기 전의 난자의 이름입니다.

그들이 모델 배아로 발전한 것은 순전히 우연이었고 세심한 과학이 뒤따랐습니다.

Polo 교수의 팀은 피부 세포를 연구하면서 유전적 지시를 조작하여 줄기 세포, 즉 약간의 자극으로 다른 유형의 세포가 될 수 있는 세포로 전환했습니다.

그러나 약 2%의 세포가 제대로 작동하지 않았습니다. 그들은 줄기 세포로 변하는 대신에 예상치 못한 유전자의 가방을 켰습니다. 초기 배아가 정자에 의해 수정된 후 며칠 안에 켜질 것과 같은 유전자입니다.

평평한 페트리 접시에 펼쳐져 있는 이 이상한 세포들은 그냥 거기에 앉아 있었습니다. 세포가 서로 가까이 있을 때 무엇을 할 수 있을지 궁금해한 폴로 교수의 팀은 세포를 바닥에서 함께 부수는 거꾸로 된 피라미드 모양의 작은 항아리에 넣었습니다.

5~6일 후, Polo 교수의 팀은 세포가 더 이상 그냥 거기에 앉아 있지 않다는 것을 발견하기 위해 항아리로 돌아갔습니다. 대신, 그들은 작은 공으로 자체 조립되었습니다. 그들이 이 공들을 연구했을 때, 그들은 각각의 내부에 더 작은 두 번째 공이 있다는 것을 발견했습니다. 원시 내배엽과 배아 줄기 세포는 실제 배아에서 결국 인간이 될 것입니다.

갑자기 자신이 한 일을 깨닫고 폴로 교수는 실험을 중단했습니다. 그는 Monash University의 윤리 위원회와 연방 정부의 배아 연구 라이선스 위원회에 연락했습니다.

Polo 교수는 세포가 자란 곳과 유사한 일련의 우물을 보유하고 있습니다. 크레딧: 제이슨 사우스

“이 문제를 해결하는 데 몇 달이 걸렸습니다. 결국 그들은 우리가 어떻게 진행할지 결정할 때까지 우리가 그것을 만드는 것을 중단하기를 원한다고 말했습니다.”라고 Polo 교수는 말했습니다.

규제 기관은 수요일에 세포를 "인간 배아 관련 연구법 2002에서 인간 배아의 정의"에 부합하는 것으로 보고 그러한 세포를 규제할 것이라고 밝혔습니다. 14일 이상 발전했습니다.

유사한 단계의 인간 배아와 비교하여 모델 배아는 동일한 세포를 많이 공유합니다. 표준 IVF 배아 품질 점수에 대해 테스트했을 때 모델 배아는 "양호"로 등급이 매겨졌습니다.

그러나 연구원들과 독립 과학자들은 그들이 생명이나 생존 가능한 배아를 창조했다고 믿지 않는다는 점을 강조하고 있습니다.

멜버른 대학의 줄기 세포 과학 윤리, 교육 및 정책 교수인 메건 먼지는 "나는 그들의 배아 발달 모델이 복제품이거나 복제품이 될 것이라고 생각하지 않는다"고 말했다.

"생물학은 너무 복잡해서 극도로 어려울 것입니다. 그리고 그것이 우리가 동물 연구에서 보고 있는 것입니다."

그러나 주요 발달 생물학 전문가 Yi Zheng과 Jianping Fu의 사설은 다음 연구와 함께 발표되었습니다. 자연, 이러한 꼬임이 곧 해결될 가능성이 있다고 지적합니다.

"프로토콜이 최적화됨에 따라 이 배반포체는 인간 배반포를 보다 가깝게 모방할 것입니다."라고 그들은 씁니다.

“많은 사람들에게 인간 배반포 연구는 자연 인간 배반포 연구보다 윤리적으로 덜 도전적일 것입니다. 그러나 다른 사람들은 인간 배반구 연구를 인간 배아를 조작하는 경로로 볼 수 있습니다. 이것은 필연적으로 생명 윤리 문제로 이어질 것입니다. 인간 블라스토이드의 윤리적 지위는 어떠해야 하며 어떻게 규제해야 합니까?”

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과학과 건강은 증거에 엄밀히 초점을 맞추어 설명하고 분석했습니다. Examine은 과학 기자 Liam Mannix의 주간 뉴스레터입니다. 매주 화요일에 받으려면 등록하십시오.


복제로 만들어진 인간 줄기세포

Breakthrough는 유도 된 성인 라인과의 대결을 설정합니다.

그것은 약 15년 ​​전에 생물 의학 혁명에 대한 큰 희망으로 환영받았습니다. 복제 기술을 사용하여 언젠가는 당뇨병에서 파킨슨병에 이르는 질병을 치료할 완벽하게 일치하는 조직을 만드는 것입니다. 그 이후로 이 접근 방식은 사기와 최근 몇 년 동안 경쟁 기술에 의해 가려진 윤리적 논쟁에 휘말렸습니다. 대부분의 그룹은 복제를 통해 환자별 배아줄기세포(ESC)를 생산하는 까다로운 핵심 방법을 오래 전에 포기했습니다. 더 조용한 토론이 이어졌습니다. 여전히 '치료적' 복제가 필요한가요?

Beaverton에 있는 Oregon Health and Science University의 생식 생물학 전문가인 Shoukhrat Mitalipov와 그의 동료들이 이번 주 1에 발표한 논문은 그 논쟁에 다시 불을 붙일 것입니다. Mitalipov와 그의 팀은 마침내 복제를 통해 환자별 ESC를 만들었으며 이 기술이 추구할 가치가 있음을 증명하기를 열망하고 있습니다.

치료용 복제 또는 체세포 핵 이식(SCNT)은 1996년 복제된 양 돌리를 만드는 데 사용된 것과 동일한 과정으로 시작됩니다. 피부와 같은 신체 조직의 기증자 세포는 수정되지 않은 난자와 융합됩니다. 핵이 제거되었습니다. 난자는 기증자 세포의 DNA를 배아 상태로 '재프로그래밍'하고 초기 배반포 단계에 도달할 때까지 분열합니다. 그런 다음 세포를 수확하고 배양하여 기증자와 유전적으로 일치하고 인체의 거의 모든 세포 유형이 될 수 있는 안정적인 세포주를 만듭니다.

많은 과학자들이 지금까지 아무도 성공하지 못한 인간 SCNT 세포주를 만들려고 시도했습니다. 가장 악명 높은 것은 한국 서울대학교의 황우석이 수백 개의 인간 난자를 사용하여 2004년과 2005년에 두 차례에 걸친 성공을 보고한 것입니다. 둘 다 날조된 것으로 판명되었습니다. 다른 연구자들은 약간의 진전을 이루었습니다. Mitalipov는 2007년 원숭이 2에서 SCNT 계통을 만들었습니다. 그리고 New York Stem Cell Foundation의 재생 의학 전문가인 Dieter Egli는 인간 SCNT 계통 3을 성공적으로 생산했지만, 이는 난자의 핵이 세포에 남아 있을 때만 가능했습니다. 그 결과 세포의 염색체 수가 비정상적으로 많아 사용이 제한되었습니다.

Mitalipov와 그의 그룹은 대학 광고 캠페인을 통해 모집된 젊은 기증자의 난자를 사용하여 지난 9월 새로운 연구를 시작했습니다. 12월에 일부 잘못된 시작 후에 Mitalipov가 조작한 4개의 복제된 배아에서 세포가 자라기 시작했습니다. "그것은 식민지처럼 보입니다. 식민지처럼 보입니다." 그는 계속 생각했습니다. 일본 센다이 출신의 불임 전문가 Masahito Tachibana는 Mitalipov의 실험실에서 5년간의 연구를 마치고 신경질적으로 1mm 너비의 세포 덩어리를 절단하고 새로운 배양 접시로 옮겼습니다. 성공. Mitalipov는 휴가 계획을 취소했습니다. “크리스마스에 세포를 배양하면서 행복했습니다.”라고 그는 말합니다. “우리 가족은 이해했습니다.”

성공은 사소한 기술적 조정을 통해 이루어졌습니다. 연구자들은 비활성화된 센다이 바이러스(세포 융합을 유도하는 것으로 알려짐)를 사용하여 난자와 체세포를 결합하고 전기 충격을 사용하여 배아 발달을 활성화했습니다. 그들의 첫 번째 시도에서 6개의 배반포가 생성되었지만 안정적인 세포주가 없었을 때, 그들은 조기 활성화로부터 난자를 보호하는 카페인을 추가했습니다.

이러한 기술 중 어느 것도 새로운 것은 아니지만 연구자들은 인간 세포로 이동하기 전에 1,000개 이상의 원숭이 알에서 다양한 조합으로 이를 테스트했습니다. "그들은 프로토콜을 올바르게 개선했습니다."라고 Egli는 말합니다. “큰 소식입니다. 설득력이 있습니다. 난 그것을 믿는다."

실험은 몇 달 밖에 걸리지 않았다고 Mitalipov는 말합니다. "사람들은 당신이 2007년에 원숭이에게 그것을 했다고 말합니다. 왜 인간에게 6년이 걸렸습니까?" 그는 대부분의 시간을 배아 연구에 관한 미국 규정을 탐색하는 데 보냈다고 말합니다.

연구자들은 SCNT 세포가 자발적으로 수축할 수 있는 심장 세포를 포함하여 다양한 세포 유형을 형성할 수 있음을 증명하기 위해 일련의 테스트를 수행했습니다.

그들의 첫 번째 세포주는 태아 피부 세포를 사용하여 만들어졌고 다른 세포주는 리 증후군(Leigh syndrome)이라는 희귀 대사 장애를 가진 8개월 된 환자의 기증자 세포를 사용하여 파생되어 ESC가 더 성숙한 기증자 세포에서 만들어질 수 있음을 증명했습니다. 이 기술은 엄청난 수의 난자를 필요로 하지 않습니다. 하나의 세포주를 생산하는 데 한 기증자로부터 15개가 필요하고 다른 세포주를 만드는 데 다른 기증자로부터 5개가 필요했습니다. "효율성이 가장 인상적이었습니다."라고 매사추세츠주 보스턴 아동 병원의 줄기세포 전문가인 조지 데일리(George Daley)는 말합니다.

이러한 개선은 SCNT 연구가 여전히 가치가 있다는 것을 사람들에게 확신시키기 위해 필요할 수 있습니다. 실험을 위한 난자 기증자들은 미화 3,000~7,000달러의 보상금을 받았다. 이것은 비용이 많이 들고 일부 생명 윤리학자에 따르면 가난한 사람들을 먹이로 삼는 장기 거래를 일으킬 위험이 있습니다. 이 기술은 배아의 파괴를 필요로 하기 때문에 미국 국립 보건원(NIH)의 자금을 SCNT 유래 세포주를 만들거나 연구하는 데 사용할 수 없어 추가 임상 연구를 방해합니다. (Mitalipov는 NIH 지원 연구를 위해 별도의 실험실을 유지합니다.)

기술이 인간 클론을 만드는 데 사용될 수 있다는 대중의 두려움은 또 다른 문제입니다. 플로리다 팜비치에 있는 유전학 정책 연구소(Genetics Policy Institute)의 버나드 시겔(Bernard Siegel) 전무이사는 이번 연구가 줄기세포 연구 반대자들이 이용할 수 있는 "복제 히스테리"를 촉발할 수 있다고 말했다. 그러나 Mitalipov는 복제를 통해 원숭이를 생산하기 위해 10년 이상 성공하지 못했습니다. Tachibana는 다가오는 출판물이 SCNT 기술을 사용하여 인간의 생식 복제가 불가능한 이유를 설명할 것이라고 말했습니다.

그럼에도 불구하고 Daley와 대부분의 다른 줄기 세포 연구자들은 유전적으로 일치하는 환자 특이적 세포주를 만드는 또 다른 방법으로 전환했습니다. 즉, 성체 세포를 배아 상태로 재프로그래밍하여 유도 만능 줄기(iPS) 세포를 생산하는 것입니다. 2006년에 처음 보고된 이 기술에는 난자, 복제 또는 배아 파괴가 포함되지 않습니다 4 . "솔직히 [이 논문에서] 가장 놀라운 점은 iPS 세포 시대에 누군가가 여전히 인간 [SCNT]을 하고 있다는 것입니다. .

그러나 Stojkovic은 다른 사람들과 마찬가지로 iPS와 SCNT 세포 간의 일대일 비교 결과를 기다리고 있습니다. 일부 연구에 따르면 iPS 세포는 완전히 재프로그래밍되지 않으며 SCNT에서 파생된 줄기 세포는 시험관 내 수분. Mitalipov와 Tachibana는 현재 동일한 기증자 세포에서 유래한 iPS 세포와 SCNT 세포를 비교하는 연구를 수행하고 있습니다. "이러한 결과는 매혹적일 것"이라고 Daley는 말합니다.


BioRescue는 4개의 새로운 북부 흰 코뿔소 배아를 만듭니다.

이것은 케냐의 난자 수집에서 이탈리아의 체외 수정 및 냉동 보존에 이르기까지 가장 성공적인 일련의 절차입니다. 케냐 야생 동물 서비스(Kenya Wildlife Service), 올 페제타 보호(Ol Pejeta Conservancy) 및 아반테아(Avantea)가 수행한 적이 있습니다. 또한 팀은 2020년 12월에 수행된 남부 흰 코뿔소 황소 Owuan의 성공적인 살균을 확인했습니다. 이제 황소는 미래 북부 흰 코뿔소의 잠재적 대리모로 확인된 Ol Pejeta 남부 흰 코뿔소 암컷에게 소개될 것입니다. 자식.

케냐 올 페제타 보호구역(Ol Pejeta Conservancy)의 암컷 나진(Najin)과 파투(Fatu)는 세계에서 유일하게 남아 있는 북부 흰코뿔소입니다. 북부흰코뿔소의 멸종을 방지하기 위해 라이프니츠-IZW(Leibniz-IZW)가 이끄는 과학자와 환경보호론자들로 구성된 국제 컨소시엄은 두 암컷에서 미성숙 난자 세포(난모세포)를 채취하고 죽은 수컷의 냉동 정자를 사용하여 인공 수정을 하고 있습니다. 2019년부터 생존 가능한 북부 흰코뿔소 배아. 가까운 장래에 이 배아는 북부 흰코뿔소 자손을 개발하기 위해 남부 흰코뿔소 대리모에게 이식될 것입니다.

2021년 3월 28일, 동물을 전신 마취시킨 후 초음파 유도 프로브를 사용하여 Fatu의 난소에서 19개의 난모세포를 채취했습니다. 파투는 나진의 딸이자 수단의 손녀인 북부흰코뿔소 두 마리 중 동생이다. 마취와 난자 채취 절차는 합병증 없이 순조롭게 진행되었습니다. 이탈리아에 있는 Avantea의 실험실에서 난자 세포를 배양하고 성숙시킨 후, 그 중 14개는 세포질 내 정자 주입(ICSI)이라는 절차를 사용하여 죽은 북부 흰 코뿔소 황소 수니의 해동된 정자와 수정되었습니다. 4개의 수정된 난모세포는 이전 절차에서 이미 생성된 5개의 배아와 함께 현재 액체 질소에 저장되는 생존 가능한 배아로 발달했습니다. 현재 총 9개의 배아가 있으며, 모두 Fatu에서 채취한 난모세포에서 유래했습니다.

"우리는 3월의 마지막 난자 채취의 실험실 결과에 흥분합니다. 이제 9개의 순수한 북부 흰 코뿔소 배아가 개발되었으므로 프로젝트의 파트너는 프로젝트의 다음 단계인 대리 남부 백색 코뿔소로 배아 이식에 착수해야 합니다. Ol Pejeta Conservancy의 암컷입니다. 우리는 종의 생존을 보장할 프로젝트에서 자손을 얻기를 간절히 바라고 있습니다. 나지브 발랄라.

배아 발달은 개별화되고 방해받지 않는 배양 환경을 제공하도록 설계되고 Merck가 기증한 통합 연속 배아 모니터링 기능을 갖춘 혁신적인 탁상형 배양기 Geri®의 도움으로 이루어졌습니다.

"Merck는 Project BioRescue의 장기적인 파트너입니다. 우리는 NWR을 멸종 위기에서 구할 수 있는 기회를 증가시키기 위해 혁신적인 번식 기술을 제공함으로써 Northern White Rhinos(NWR)를 구하기 위한 노력을 지원하고 있습니다"라고 글로벌 책임자인 Sebastian Bohl이 말했습니다. 새로운 사업, 불임, 머크.

가장 최근 시술에서 나진(31)씨는 선 상태에서 가벼운 진정제를 투여하고 초음파 검사를 받았다. 초음파 결과, 연구팀은 그녀가 유망한 난모세포를 충분히 발달시키지 못한 것으로 보여 시술을 시도하지 않기로 결정했다. 컨소시엄은 윤리적 위험 평가가 프로그램의 중추적인 부분이므로 곧 나진과 난자 수집을 계속할지 여부와 방법에 대해 철저히 논의할 것입니다.

BioRescue 프로그램의 성공을 위한 또 다른 매우 중요한 단계는 2020년 12월에 남부 흰코뿔소 황소 Owuan을 선택하고 살균한 것입니다. 이 동물은 BioRescue 팀에 의해 최신 기술을 사용하는 최소 침습 비수술 절차로 살균되었습니다. 예술 장비. 멸균은 합병증 없이 순조롭게 진행되었습니다. 2021년 3월 BioRescue 팀은 전기 사정을 통해 살균이 실제로 성공적임을 확인했습니다. Owuan은 시험에서 잘 회복되었으며 미래의 역할에 달려 있습니다. 불임 황소로서 그는 임신의 위험 없이 잠재적 대리모의 생식 주기를 자신의 행동을 통해 확실하게 나타낼 것입니다. 이 정보는 생식 주기의 정확한 시기에 대리모에게 배아를 옮기기 위한 중요한 전제 조건입니다. 케냐 야생동물 서비스(Kenya Wildlife Service)의 지도 하에 팀은 Owuan 회사를 위해 선별된 남부 흰코뿔소 암컷의 위치를 ​​신중하게 계획했으며 앞으로 몇 주 안에 이들에 대한 소개가 진행될 예정입니다.

독일 연방 교육 연구부(BMBF)와 재단 Nadace ?EZ, 자선가인 Dr Richard McLellan 및 Merck EMD 재단과 같은 추가 기부자들이 상당한 자금을 지원하는 BioRescue 연구 프로그램은 COVID-19 대유행이 팀이 케냐로 여행할 수 있는 한 3~4개월 주기로 북부 흰코뿔소 암컷에서 채취한 난모세포. 살균이 확인되고 대리인의 재배치가 계획됨에 따라 프로그램의 다음 이정표가 다가왔습니다.

추가 정보 및 지원: http://www. 생물 구조. 조직

사진 컬렉션은 다음 링크를 통해 액세스할 수 있습니다: https:// / hidrive. 이오노스. com/공유/xmoqdysq6s

사진은 이 보도 자료에 묘사된 이야기와 직접적인 관련이 있는 경우에만 사용해야 하며 크레딧은 "BioRescue/Rio 사진작가"여야 합니다.

라이프니츠 동물원 및 야생동물 연구 연구소(Leibniz-IZW)

Leibniz-IZW는 Forschungsverbund Berlin e.V.의 국제적으로 유명한 독일 연구 기관입니다. 라이프니츠 협회 회원. 우리의 임무는 전 지구적 변화에 대한 야생 동물의 진화적 적응을 조사하고 생물다양성 보존을 위한 새로운 개념과 조치를 개발하는 것입니다. 이를 달성하기 위해 우리 과학자들은 생물학 및 수의학의 광범위한 학제 ​​간 전문 지식을 사용하여 대중 및 이해 관계자와 긴밀한 대화를 통해 분자에서 조경 수준에 이르기까지 기본 및 응용 연구를 수행합니다. 또한, 우리는 과학 커뮤니티를 위한 독특하고 고품질의 서비스를 제공하기 위해 최선을 다하고 있습니다. http://www. 이즈베를린. 드

Safari Park Dv?r Králové은 체코의 사파리 공원입니다. 이곳은 아프리카 외 지역에서 가장 우수한 코뿔소 사육자 중 하나이며 인간의 보살핌 속에서 자란 북부흰코뿔소(남은 암컷 나진과 파투)가 이곳에서 태어난 유일한 곳입니다. Safari Park Dv?r Králové은 북부 흰 코뿔소를 구하기 위한 노력을 조정합니다. 사파리파크.cz/ko/

케냐 야생 동물 서비스(KWS)는 의회법(Cap 376)에 의해 설립되었으며 현재 WCMA(2013)에 의해 폐지되었으며 케냐의 야생 동물을 보호 및 관리하고 관련 법률 및 규정을 집행할 권한이 있는 국영 기업입니다. KWS는 이해 관계자와 협력하여 커뮤니티 보존을 포함한 모든 보호 지역 시스템에서 야생 동물 자원의 보존 및 관리를 수행합니다. kws.go.ke/

Ol Pejeta Conservancy는 90,000에이커 규모의 야생 동물 보호 단체로, 야생 동물을 보호하고, 유인원을 위한 보호 구역을 제공하고, 야생 동물 관광을 통해 수입을 창출하고, 보존 및 지역 사회 개발에 재투자하기 위한 보완 기업입니다. 더 넓은 라이키피아 생태계의 핵심 보전 지역이며 통합된 야생 동물 및 가축 시스템에서 지속 가능하고 다양하며 건강한 야생 동물 개체군을 관리하는 것을 목표로 합니다. 올 페제타 보호구역(Ol Pejeta Conservancy)은 동아프리카에서 가장 큰 검은 코뿔소 보호구역으로 케냐에서 침팬지를 볼 수 있는 유일한 곳입니다. 그것은 또한 지구상에서 마지막 두 마리의 북부 흰 코뿔소의 고향이기도 합니다. Ol Pejeta의 최첨단 야생 동물 보안에는 특수 K-9 유닛, 태양열 전기 울타리를 따라 있는 모션 센서 카메라, 전용 Rhino 보호 유닛이 포함됩니다. Ol Pejeta는 또한 가축과 야생 동물을 통합합니다. 이 둘은 보존을 위한 수입을 올리는 수단일 뿐만 아니라 방목지 관리 도구이기도 합니다. http://www. 올페제타콘서번시. 조직/

Avantea는 이탈리아 크레모나에 위치한 생명공학 연구 및 동물 번식을 위한 첨단 기술 연구소입니다. Avantea는 20년 이상의 경험과 가축의 보조 생식에 대한 노하우를 생물 의학 및 동물 번식 분야에서 수행된 다년간의 연구를 통해 개발했습니다. http://www. 아반떼. 그것/ ko/

이탈리아 파도바 대학교(University of Padua)는 800년을 기념하는 세계에서 가장 오래된 대학교 중 하나입니다. 비교 생물의학 및 식품과학부는 연구 프로젝트 및 교육 프로그램의 윤리적 평가 및 평가에 특히 중점을 두고 야생 동물 보호 및 복지 분야에서 선도적인 연구 및 교육을 개발하고 있습니다. http://www. 유니프디. 그것/ ko/

라이프니츠 동물원 및 야생동물 연구 연구소(Leibniz-IZW)
Thomas Hildebrandt 박사
BioRescue 프로젝트 책임자 및 생식 관리 부서장
+49305168440
[email protected]

스티븐 시트
과학 커뮤니케이션 책임자
+491778572673
[email protected]

사파리 파크 Dv?r Králové
얀 슈타이스칼
커뮤니케이션 및 국제 프로젝트 이사
+420608009072
[email protected]

올 페제타 보호구역
엘로디 샘페레
커뮤니케이션 전문가
+254 / 727 341 612
[email protected]

케냐 야생 동물 서비스(KWS)
데이비드 은디레 박사
수의학 서비스 책임자
+254/722 556 380
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파도바 대학교
바바라 드 모리
수의학, 보존 및 동물 윤리 연구소 소장 +39 / 3403747666
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머크 KGaA
알렉산더 샤플리긴
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줄기 세포로 만든 기초 난자와 정자 세포

인간에서 처음으로 달성한 위업은 불임 치료를 향한 한 걸음이 될 수 있습니다.

이스라엘과 영국의 연구원들은 사람의 피부 세포에서 시작하여 접시에 인간 정자와 난자 전구체 세포를 만들었습니다. 이 성과는 불임 치료를 향한 작은 발걸음이지만 상당한 논란과 규제 문제에 직면할 수 있습니다.

에 온라인 보고된 실험 12월 24일, 생쥐에서 처음 개발된 절차의 일부를 인간에게 재현합니다. 여기서 유도 만능 줄기(iPS) 세포라고 불리는 세포(거의 모든 유형의 세포로 분화할 수 있는 '재프로그래밍된' 세포)가 정자나 난자를 생성하는 데 사용됩니다. 이후에 에 의해 살아있는 출생을 일으키도록 조작된다. 시험관 내 수분.

2012년 일본 교토 대학의 줄기세포 생물학자인 Mitinori Saitou와 그의 동료들은 최초의 인공 원시 생식 세포(PGC) 2를 만들었습니다. 이들은 배아 발달 중에 나타나고 나중에 정자나 난자를 생성하는 특수화된 세포입니다. Saitou는 iPS 세포 기술을 통해 배아와 같은 상태로 재프로그래밍된 피부 세포로 시작하여 접시에서 그것들을 만들었습니다('줄기 세포: 계란 엔지니어' 참조). 그들은 또한 배아줄기세포를 시작으로 동일한 결과를 얻을 수 있었습니다.

그의 세포는 접시의 이 전조 단계 이상으로 발달할 수 없었지만, Saito는 쥐의 고환에 넣으면 정자로 성숙하고 난소에 넣으면 기능적인 난자로 성숙한다는 것을 발견했습니다. 정자와 난자를 모두 사용할 수 있습니다. 시험관 내 수분.

인간에서 유사한 기능의 배우자를 조작하려는 노력은 PGC 유사 세포를 생산했지만 줄기 세포를 배우자로 전환하는 성공률이 너무 낮아 다른 사람들이 작업을 확장하기가 어려웠습니다. . 이전의 노력은 또한 세포를 병원에서 사용할 수 없게 만드는 유전자의 도입을 요구했습니다.

무료 팟캐스트

Ewen Callaway는 불임 치료에 실험실에서 만든 정자와 난자 세포를 사용하는 것의 윤리적 문제에 대해 보고합니다.

이제 영국 케임브리지 대학의 Azim Surani와 이스라엘 Rehovot의 Weizmann Institute of Science의 Jacob Hanna가 이끄는 팀이 복제했습니다. 시험관 내 Hanna는 인간에 대한 Saitou의 노력 중 "전반부"라고 말합니다.

생물학자들의 성공 비결은 올바른 출발점을 찾는 것이었습니다. 인간에서 위업을 반복하는 데 있어 주요 장애물은 마우스와 인간 배아줄기세포가 근본적으로 다르다는 사실이었습니다. 마우스 배아 줄기 세포는 '순진한'(어떤 분화 경로로든 동조하기 쉬운) 반면, 인간 줄기 세포는 적응력이 떨어지는 방식으로 '프라이밍'되어 있습니다.

그러나 Hanna는 그와 그의 동료들이 2013년에 보고한 바와 같이 세포를 조정함으로써 이러한 차이를 극복할 수 있다는 것을 깨달았습니다 3 . He and his team developed a way of making human stem cells that were naive like those of mice. “The first time we used those cells with the Saitou protocol — boom! We got PGCs with high efficiency,” he says.

Working together, Surani and Hanna were able to use embryonic stem cells and iPS cells, from both males and females, to make gamete precursor cells with 25–40% efficiency

“It is exciting that the Surani and Hanna labs have found a way to generate progenitor germline cells with the highest efficiency ever reported,” says Amander Clark, a reproductive-biology expert at the University of California, Los Angeles.

The cells have many of the hallmarks of primordial germ cells. In particular, their ‘epigenetic’ pattern — chemical modifications to the chromosomes that affect gene expression — was similar to those of primordial germ cells. The team compared protein markers in their artificial PGCs with those in real PGCs collected from aborted fetuses, and found them to be very similar.

“They are as similar to human PGCs as Saitou’s [artificial] PGCs are to real mouse PGCs,” says Hanna.

Saitou says mechanistic insights offered by the paper will probably boost efforts to further understand, and control, this process. In particular, in humans, a protein called SOX17 seems to have a key role that in mice is played by a different protein, called Sox2.

Saitou, who is also working on developing human PGCs in a dish, calls it an “interesting finding”, and says that, overall, the process for creating such cells “is much more clearly defined compared to previous, ambiguous work, and therefore this will be a good foundation for further investigations”. Clark agrees: “It is the special mechanistic insight into human germline development that makes this paper unique,” she says.

In mice, the next step is to introduce the engineered PGCs into testes or ovaries, to complete the ‘second half’ of the Saitou process, their development into functional sperm or eggs.

But Hanna says that he and his collaborators are “not ready to take that plunge” in humans, and others agree that there are still too many unknowns to introduce the artificial PGCs into humans.

He says that they are also considering injecting the human artificial PGCs into the testes or ovaries of mice and other animals, or to try the whole experiment in non-human primates. He says that ongoing efforts by Saitou and others, to complete the process of mouse sperm and egg development 시험관 내, could lead to a recipe that can be tweaked for humans.

“I’m still gathering my thoughts. We will see after the paper is published what the community will think,” Hanna says.

Clark says that regulators should make way for the human experiments that will be necessary to move the technology to the clinic and potentially enable some sterile men and women to conceive. In the United States, for example, law forbids federal funding of the creation of human embryos for research purposes, something that would be necessary to test the new technology. The restrictions “need to be lifted and replaced with universal guidelines on how to do this research ethically and safely”, she says.

In principle, the process could even be used to derive egg cells from a man's body. These could be fertilized 시험관 내 by another man's sperm and the resulting embryo could then be implanted in a surrogate mother — enabling the two men to have a biological child together. But the technical hurdles would be formidable: in particular, men do not have ovaries in which the precursor cells could be allowed to mature into eggs. Moreover, the idea would be guaranteed to face controversy.

"It is really important to emphasize that while this scenario might be technically possible and feasible, it is remote at this stage and many challenges need to be overcome," Hanna says. Enabling two women to have biological children together seems even more remote, the authors add, because only men have the Y chromosome, which is essential for the production of sperm cells.


추상적 인

During skeletal muscle development, myocytes aggregate and fuse to form multinucleated muscle fibers. Inhibition of myocyte fusion is thought to significantly derail the differentiation of functional muscle fibers. Despite the purported importance of fusion in myogenesis, 생체 내 studies of this process in vertebrates are rather limited. Myomaker, a multipass transmembrane protein, has been shown to be the first muscle-specific fusion protein essential for myocyte fusion in the mouse. We have generated loss-of-function alleles in zebrafish myomaker, and found that fusion of myocytes into syncytial fast-twitch muscles was significantly compromised. However, mutant myocytes could be recruited to fuse with wild-type myocytes in chimeric embryos, albeit rather inefficiently. Conversely, overexpression of Myomaker was sufficient to induce hyperfusion among fast-twitch myocytes, and it also induced fusion among slow-twitch myocytes that are normally fusion-incompetent. In line with this, Myomaker overexpression also triggered fusion in another myocyte fusion mutant compromised in the function of the junctional cell adhesion molecule, Jam2a. We also provide evidence that Rac, a regulator of actin cytoskeleton, requires Myomaker activity to induce fusion, and that an approximately 3 kb of myomaker promoter sequence, with multiple E-box motifs, is sufficient to direct expression within the fast-twitch muscle lineage. Taken together, our findings underscore a conserved role for Myomaker in vertebrate myocyte fusion. Strikingly, and in contrast to the mouse, homozygous myomaker mutants are viable and do not exhibit discernible locomotory defects. Thus, in the zebrafish, myocyte fusion is not an absolute requirement for skeletal muscle morphogenesis and function.


난자

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난자, in the human female reproductive system, growth process in which the primary egg cell (or ovum) becomes a mature ovum. In any one human generation, the egg’s development starts before the female that carries it is even born 8 to 20 weeks after the fetus has started to grow, cells that are to become mature ova have been multiplying, and by the time that the female is born, all of the egg cells that the ovaries will release during the active reproductive years of the female are already present in the ovaries. These cells, known as the primary ova, number around 400,000. The primary ova remain dormant until just prior to ovulation, when an egg is released from the ovary. Some egg cells may not mature for 40 years others degenerate and never mature.

The egg cell remains as a primary ovum until the time for its release from the ovary arrives. The egg then undergoes a cell division. The nucleus splits so that half of its chromosomes go to one cell and half to another. One of these two new cells is usually larger than the other and is known as the secondary ovum the smaller cell is known as a polar body. The secondary ovum grows in the ovary until it reaches maturation it then breaks loose and is carried into the fallopian tubes. Once in the fallopian tubes, the secondary egg cell is suitable for fertilization by the male sperm cells. See also ovulation ovum.


각주

As was pointed out by Maître-Jan in 1722, the egg examined by Malpighi may technically be called “unincubated,” but as it was left sitting in the Bolognese sun in August, it was not unheated.

Preformation was a conservative theory, emphasizing the lack of change between generations. Its principal failure was its inability to account for the variations known by the limited genetic evidence of the time. It was known, for instance, that matings between white and black parents produced children of intermediate skin color, an impossibility if inheritance and development were solely through either the sperm or the egg. In more controlled experiments, the German botanist Joseph Kölreuter (1766) had produced hybrid tobacco plants having the characteristics of both species. Moreover, by mating the hybrid to either the male or female parent, Kölreuter was able to “revert” the hybrid back to one or the other parental type after several generations. Thus, inheritance seemed to arise from a mixture of parental components.

From the same root as germination: 라틴어 germen, meaning “sprout” or 𠇋ud.” The names of the three germ layers are from the Greek: ectoderm from ektos (“outside”) plus derma (skin) mesoderm from mesos (“middle”), and endoderm from 엔돈 (“within”).

von Baer could hardly believe that he had at last found it when so many others—Harvey, de Graaf, von Haller, Prevost, Dumas, and even Purkinje—had failed. “I recoiled as if struck by lightening … I had to try to relax a while before I could work up enough courage to look again, as I was afraid I had been deluded by a phantom. Is it not strange that a sight which is expected, and indeed hoped for, should be frightening when it eventually materializes?”

von Baer formulated these generalizations prior to Darwin's theory of evolution. “Lower animals” would be those appearing earlier in life's history.

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Somatic Embryogenesis | 생명공학

The below mentioned article provides a study note on somatic embryogenesis.

Somatic embryogenesis is the process in which a single cell or a small group of cells follow a developmental pathway that leads to reproducible regeneration of non-zygotic embryos which are capable of producing a complete plant. These non-zygotic embryos may originate directly from other organs or parthenogenetic embryos (without fertiliza­tion) or androgenetic embryos (from the male gametophyte).

In general somatic embryos are those which are formed from the somatic tissue in cultural i.e., in vitro condition. Embryos formed in cultures have been variously designated as accessory embryos, adventive embryos, embryoids and supernumerary embryos.

The initiation and development of embryos from somatic tissues in plant culture was first recognised by Steward et.al. (1958) and Reinert (1958-1959) in Daucus carota.

Kohlenbach (1978) classified the embryos in following manner:

I. Zygotic Embryos: These are formed by fertilized egg or the zygote.

Ⅱ. Non-zygotic Embryos: These are formed by cells other than zygote.

(a) Somatic Embryos: These are formed by sporophytic cells (except zygote), directly arising from other embryos or organs which are termed as adventive embryos.

(b) Parthenogenetic Embryos: These are formed by unfertilized egg.

(c) Androgenetic Embryos: These are formed by the male gametophyte i.e., micro­spore or pollen grains.

Somatic embryos should closely resemble their bipolar structure as in the case of zygotic embryos. There should be appropriate root, shoot and cotyledonary development.

Sharp et. 알. (1980) described mainly two routes for somatic embryogenesis:

1. Direct Embryogenesis:

The embryos initiate directly from the explant without callus formation and here some cells which are called as ‘Pre-embryonic determined cells’ (PEDC) initiates embryonic development, only those cells need to be released. Such cells are found mostly in embryonic tissues, certain tissues of young in vitro grown plants, hypocotyl, nucellus, embryo-sac, etc.

2. Indirect Embryogenesis:

Here, the embryos are developed through cell proliferation i.e., callus formation. The cells from which embryos arise are called as ‘Induced embryogenic determined cells’ (IEDC). Here growth regulators with specific cul­tural conditions are required for initiation of callus and then redetermination of those cells into the embryo development.

Somatic embryos arise from single cells located within clusters of meristematic cells either in callus mass or in suspension. Such cells develop into pro-embryos with polarity following a pattern that tends to mimic the general pattern associated with the development of in vivo embryos in the ovule. Pro-embryo initials may be single cells or multicellular groups. When the conditions are suitable these embryos germinate to produce plantlets (Fig. 18.4).

Medium and Growth Regulators Requirement:

Somatic embryogenesis encompasses various stages from callus initiation to embryo development, maturation and subsequent plantlet formation. For many species different types of media are required for the whole process.

The presence of auxin in the media is generally essential for embryo initiation, but lowering the auxin content further in the medium is helpful for embryogenic clump formation which ultimately develops into mature embryo.

In general it has been observed that the auxin or auxin in combination with cytokinin in different ratios appear essential for the onset of growth of somatic embryos. Sometimes the medium lacking auxin but addition of low levels of cytokinin in combination with ABA may prove beneficial for somatic embryogenesis.

Sometimes the addition of charcoal into the medium has been proved to be useful for somatic embryo development. The germination of somatic embryos does not require any growth regu­lators, application of GA3 or Zeatin may be helpful for shoot and root development.

Difference between Zygotic Embryogenesis and Somatic Embryogenesis:

In angiosperms, the ovule contains a haploid egg cell or ovum which is a female gamete gets fertilised by the male gamete resulting in the formation of unicellular zygote. This zygote gives rise to multicellular embryo which is known as zygotic embryo and the process must be called as zygotic embryogenesis.

Embryos may be formed from the unfertilized egg or any other cell of female gametophyte or the sporophytic tissue then these are called as non-zygotic embryos. In in vivo there is no embryo development from any somatic cell of the plant, i.e., the somatic cell does not have the embryogenic poten­tial in general.

But due to the totipotency nature of plant cell the somatic cell having the complete set of genome may be induced in cultures to form the organised bipolar structures bearing cotyledons resembling the zygotic embryo.

This phenomenon is called in vitro somatic embryogenesis. The term ’embryoids’ are used to distinguish these somatic embryos from the zygotic embryos. Any sporophytic cell or gametophytic cell may undergo somatic embryogenesis due to some changes occurring at molecular level i.e., due to induction of some genes, protein production and high metabolic activity.

The stages of developmental process of both somatic embryo an zygotic embryo resem­ble each other morphologically. In both the cases the single somatic cell (sporophytic or gametophytic) or the zygotic cell undergoes divisional phases to produce the globular stage, then the heart or torpedo stage at the end of which the cotyledons or first leaves begin to develop.

In dicots two cotyledons and in monocot only one cotyledon emerges. After this stage the developmental process differs in zygotic and somatic embryo (Fig. 18.5).

The zygotic embryos undergo a prolonged maturation phase and many storage proteins are being synthesized which is primarily regulated by abscisic acid. Then a dor­mancy period is required for further germination.

But the somatic embryos can grow and differentiate to produce the root and shoot apices with leafy development without any dormancy period. Another important morphological or developmental difference is that the somatic embryos are devoid of suspensor and endosperm.

Unlike zygotic embryos or seed embryos, the somatic or adventive embryos are devoid of an endosperm as a food reserve. Fluid drilling devices are harnessed to sow the naked embryos directly into the soil, or the embryos are encapsulated in plastic strips or pellets together with a little nutrient, aimed at using embryos for large scale planting.

Applications of Somatic Embryogenesis:

(i) Large Scale Propagation Compared to Zygotic Embryos:

Induction of somatic embryogenesis forms the ultimate goal in free cell suspension cultures relying on the totipotency of the cell and could reasonably be exploited for micro-propagation.

Each cell of the suspension cultures can be induced to produce somatic embryos which can be maintained in an arrested state of development by cold storage or using mitotic inhibitors until the time of sowing. Somatic embryo­genesis is highly desirable and holds out promise for rapid multiplication in a shorter time, with a shoot-root axis.

(ii) More Useful than Organogenesis:

The mass production of adventitious embryos in cell culture is still regarded by many as the ideal propagation system. The adventitious embryo is a bipolar structure that develops directly into a complete plantlet and there is no need for a separate rooting phase as with shoot culture.

(iii) Useful for Mutagenic Studies and Mutant Production:

The somatic embryos generally arise from single cells, so it may be advantageous for mutagenic studies. Also the plantlets arising from such somatic embryos are more homogeneous in nature, so the mutant gene expression can be studied well.

(iv) Useful for Genetic Manipulation Technique:

In plant biotechnological appli­cation, during foreign gene transfer if the transformed cell gives rise to plantlet via somatic embryogenesis then there is least possibility of chimera formation. So for transgenic plant production this method of multiplication system is very much useful.

(v) Useful for Pathogen-Free Plant Production:

Plants derived from this kind of somatic embryos may be free from viral or other pathogens. So it may be an alternative approach of disease free plant production.

(vi) A Good Source of Protoplast Culture:

Embryogenic cultures are specially valu­able in providing a source of regenerable protoplasts in the graminaceous and coniferous plants. Protoplasts from these cultures were induced to divide to form a cell mass from which the embryoids, even plantlets are regenerated on a suit­able nutrient medium.

(vii) Conservation of Genetic Resources:

Somatic embryos which originate from sin­gle cells and subsequently regenerate mostly genetically uniform plants are good materials for genetic resource conservation. Embryogenic cultures as well as somatic embryos remain viable upon storage at ambient temperature, cold storage or cryostorage.


비디오 보기: Balance Of Life 암, 대비할 수 있다?! 몸속 NK세포를 지켜라! l 나는 몸신이다 (팔월 2022).