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발효 스타터 배양에서 특정 절대 혐기성 미생물을 생존 가능하게 만드는 것은 무엇입니까?

발효 스타터 배양에서 특정 절대 혐기성 미생물을 생존 가능하게 만드는 것은 무엇입니까?



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프로피오니박테리움이 절대 혐기성균(즉, 산소에 중독됨)인 경우 '유제품' 또는 고전적인 프로피오니박테리아(예: P. shermanii, P. jensenii, P. acidicpropionici 등)가 발효 시작 배양에서 생존 가능하게 만드는 것은 무엇입니까?


여기(mic.sgmjournals.org/content/127/1/121.full.pdf)가 있는 논문에 대한 링크입니다. P. 셰르마니 플라스크 배양에서 재배됩니다. 조건이 배양에서 낮은 산소 농도를 달성하도록 명확하게 설계되었지만(플라스크가 거의 가득 차 있고 가끔씩만 흔들립니다), 이는 또한 산소가 이 유기체에 독성이 없음을 나타냅니다.

또한 이것은 링크한 WP 페이지에서 가져온 것입니다.

절대 혐기성 미생물은 정상적인 대기 농도의 산소(21% O2). 산소 내성은 종에 따라 다르며 일부는 최대 8%의 산소에서 생존할 수 있고 다른 일부는 산소 농도가 0.5% 미만이 아니면 생존력을 잃습니다.


발효 유형: 발효의 8가지 유형| 산업생명공학

다음 요점은 발효의 8가지 주요 유형을 강조합니다. 유형은 다음과 같습니다. 1. 배치 발효 2. 연속 발효 3. 유가 발효 4. 혐기성 발효 5. 호기성 발효 6. 표면 발효 7. 침지 발효 8. 상태 발효.

유형 # 1. 배치 발효:

배치 발효는 초기 및 제한된 양의 멸균된 영양 배지가 발효기에 도입되기 때문에 폐쇄된 배양 시스템입니다. 배지에 적절한 미생물을 접종하고 최적의 생리적 조건에서 발효가 진행되도록 일정 시간 배양합니다. 공기 형태의 산소, 소포제, pH 조절을 위한 산 또는 염기는 발효 과정에서 추가됩니다(그림 2.11).

배양 과정에서 미생물의 세포는 증식을 겪으며 다양한 성장 및 대사 단계를 거치며 이로 인해 배양 배지, 바이오매스 및 대사 산물의 구성이 변경됩니다. 발효는 일정 기간 동안 또는 영양소가 고갈될 때까지 실행됩니다. 배양액을 수확하고 생성물을 분리한다.

배치 발효는 가장 빠른 성장률을 지원하는 배양 조건에서 바이오매스, 1차 대사산물 및 2차 대사산물을 생산하는 데 사용될 수 있으며 최대 성장은 바이오매스 생산에 사용됩니다. 기하급수적 성장기는 1차 대사산물의 최적 수율을 얻기 위해 연장되어야 하고, 2차 대사산물의 최적 수율을 얻기 위해서는 감소되어야 합니다.

사용된 배지는 미생물의 세포 및 생성물과 함께 발효기에서 인출됩니다. 원하는 생성물이 최적의 양으로 형성되면 생성물을 미생물로부터 분리하여 추후 정제한다.

아래에 자세히 설명된 장점과 단점이 있습니다.

(a) 오염 및 돌연변이의 가능성이 매우 적습니다.

(b) 작동의 단순성 및 오염 위험 감소.

(a) 모든 발효 과정에서 발효기 및 기타 장비는 세척 및 멸균되어야 한다.

(b) 각 배치 발효 주기의 일부만이 생산적입니다.

(c) 단위 기질당 높은 수율의 발효 및 초기 높은 기질 농도를 견딜 수 있는 배양에 유용합니다.

(d) 접종을 위해 발효기에 이전 배치의 작은 부분이 남아 있는 상태에서 반복 모드로 실행할 수 있습니다.

(e) Turn round time 또는 down time을 없애 발효조의 사용을 증가시킨다.

(f) 재고 배양을 준비하고 유지하는 데 운영 비용이 더 많이 듭니다.

(g) 멸균 빈도가 증가하면 기기와 프로브에 더 큰 스트레스를 줄 수 있습니다.

(h) 모든 발효과정은 멸균된 신선한 배지와 순수배양을 하여야 한다.

(i) 원하는 제품의 수율도 다를 수 있습니다.

(j) 한 배치에서 다른 배치로의 생산적 발효 사이에 비생산적인 중단 기간이 있을 것입니다.

(k) 더 개인적인 것이 필요합니다.

유형 # 2. 연속 발효:

이것은 무기한 동안 실행되는 폐쇄된 발효 시스템입니다. 이 방법은 발효기에 신선한 영양배지를 연속적으로 또는 간헐적으로 첨가하고, 사용된 미생물이 있는 배지의 등가량을 연속 또는 간헐적으로 회수하여 세포 또는 발효산물을 회수하는 방법이다(Fig. 2.12).

그림 2.12: 연속 발효기

그 결과 배지의 부피와 영양소의 농도가 최적 수준으로 유지되고 있습니다. 이것은 자동 방식으로 작동되었습니다. 연속 발효기는 높은 생산성에 도달하는 데 오랜 시간이 걸리고 가동 중지 시간을 줄이며 운영 비용을 낮추는 최대 활용도를 가지고 있습니다.

연속 모드에서는 출발 배지와 접종물을 발효기에 첨가합니다. 배양물이 성장한 후 발효기에 영양분이 공급되고 발효기에서 일정한 부피의 브로스를 유지하면서 동일한 속도로 브로쓰가 배출됩니다. 세포 주기가 있는 연속 모드에서 세포 덩어리는 박테리아를 사용한 미세 여과 또는 진균 균사체가 있는 스크린을 사용하여 발효기로 되돌아갑니다.

연속 발효는 일반적으로 다음과 같은 방법으로 수행됩니다.

(a) 단일 단계 발효

(c) 다단계 발효

(a) 단일 단계 발효:

이 과정에서 단일 발효기에 접종하고 영양 배지와 수확된 배양물의 투입과 산출을 각각 균형을 이루어 영양 배지와 배양물이 연속적인 작동을 유지합니다.

(b) 재활용 발효:

이 방법에서는 배지의 일부를 회수하여 배양 용기에 추가합니다. 따라서 배양물은 발효 용기로 재순환됩니다. 이 방법은 일반적으로 탄화수소 발효 공정에서 채택됩니다. 세포의 재활용은 발효기에서 더 많은 세포 집단을 제공하여 원하는 제품의 생산성을 높입니다.

(c) 다단계 발효:

이 공정에서는 2개 이상의 발효조를 동시에 사용하여 순차적으로 발효를 진행한다. 성장 단계 및 합성 단계와 같은 발효 과정의 다른 단계는 다른 발효기에서 수행됩니다. 일반적으로 첫 번째 발효기에서는 성장 단계가 허용되고 두 번째 이후 발효기에서는 합성 단계가 허용됩니다.

이 과정은 특히 미생물의 성장과 합성 활동이 동시에 일어나지 않는 발효에 적합합니다. 합성은 성장과 관련이 없지만 세포 증식 속도가 느려질 때 발생합니다.

연속 발효 과정은 미생물 성장 활성 또는 제품 형성에 의해 모니터링되며 이러한 방법을 다음과 같이 부릅니다.

이 방법에서 전체 세포 함량은 발효 과정의 일정한 간격으로 배양 탁도를 측정하여 일정하게 유지됩니다. 탁도 측정을 통해 발효기가 영양 공급 속도와 배양 중단 속도를 모두 조절할 수 있습니다.

이 방법이 사용되는 발효는 낮은 최대 세포 집단에서 수행되어야 하므로 기질의 사용량이 적고 기질의 낭비가 많아 발효기에서 제거됩니다. 수확된 배양물(그림 2.13).

이 방법에서는 영양 공급 속도와 수확 배양 중단 속도가 일정한 값으로 유지됩니다. 이것은 탄소원, 질소원, 염류, 산소와 같은 배지의 화학물질 중 하나의 농도를 조정하여 미생물의 성장률을 제어함으로써 달성됩니다.2 성장 제한 요인으로 작용하는 등.

위의 화학 물질 외에도 때로는 발효 과정에서 생성되는 독성 생성물의 농도, pH 값 및 온도조차도 성장 제한 요인으로 작용합니다. 이 방법은 기계적 문제가 적고 수확된 배양액에서 사용되지 않은 배지의 양이 적기 때문에 turbidostat 방법보다 더 자주 사용됩니다(그림 2.14).

그러나 연속 발효에는 다음과 같은 몇 가지 장점과 한계가 있습니다.

1. 발효기는 종료 시간이 거의 또는 전혀 없이 계속 사용됩니다.

2. 초기 접종량이 적으며 추가 접종이 필요하지 않습니다.

3. 원하는 제품을 최대한 지속적으로 생산할 수 있습니다.

4. 탄화수소와 같이 활용도가 낮은 물질도 최적으로 활용합니다.

1. 장기간의 배양과 지속적인 발효로 인한 오염 및 돌연변이의 가능성이 더 높습니다.

2. 제품 분리를 위한 지속적인 회수로 인해 영양 배지가 낭비될 가능성.

3. 원하는 제품이 미생물 세포가 아닌 항생제인 경우 프로세스가 더 복잡해지고 달성하기 어렵습니다.

4. 발효에 사용되는 미생물에 의한 산물의 생장 및 합성의 역동적 측면에 대한 지식 부족.

연속 배양 발효는 단세포 단백질, 항생제, 유기 용매, 스타터 배양 등의 생산에 사용되었습니다(표 2.2).

맥주, 사료 효모, 식초, 제빵 효모의 생산을 위해 파일럿 공장 또는 생산 공장이 설치되었습니다. 이러한 유형의 발효에는 다양한 미생물이 사용됩니다(표 2.3).

유형 # 3. 유가식 발효:

그것은 배치 발효에 대한 수정입니다. 이 공정에서 기질은 발효가 진행됨에 따라 주기적으로 나누어 추가되며, 이로 인해 기질은 항상 최적의 농도에 있게 됩니다. 이것은 일부 2차 대사 산물이 배지에 존재하는 고농도의 포도당 또는 기타 탄수화물 또는 질소 화합물에 의해 이화 산물 억제를 받기 때문에 필수적입니다.

이러한 이유로 발효 초기에는 영양배지의 중요한 요소가 소량 첨가되고 이러한 기질은 생산 단계에서 계속 소량으로 첨가된다. 이 방법은 일반적으로 페니실린과 같은 물질의 생산에 사용됩니다. Yoshida(1973)는 영양소가 고갈될 때 배지에 기질을 공급하여 영양소를 최적 수준으로 유지하기 위해 처음으로 이 용어를 도입했습니다.

유가식 발효는 세 가지 유형이 있습니다.

(i) 가변 부피 유가 배양:

동일한 매체가 추가되어 부피가 증가합니다.

(ii) 고정 부피 유가 배양:

제한 기질의 매우 농축된 용액은 매우 적은 양으로 첨가되어 매체의 부피가 미미하게 증가합니다.

발효 중 사료 공급 과정을 조절하는 데 필요한 직접적인 방법으로는 기질 농도를 측정할 수 없기 때문에 일반적으로 간접적인 방법을 사용한다. 예를 들어 유기산 생산에서 pH 값은 포도당 이용률을 결정하는 데 사용될 수 있습니다.

1. 작업 시간 연장으로 인한 높은 세포 밀도 생산(특히 성장 관련 제품).

2. 발효 중 기질 제공의 제어된 조건, 특히 예를 들어, 특정 기질의 농도와 관련하여. 탄소원.

3. 제품 형성에만 필요한 기질의 제한된 제공으로 인한 제품 또는 이화 대사 억제 효과의 생산에 대한 통제.

4. 작동 모드는 배치 발효에서 발견되는 유기체 성장 패턴의 편차를 극복하고 제어할 수 있습니다.

5. 증발에 의해 손실된 수분을 대체할 수 있습니다.

6. 독성 물질 또는 용해도가 낮은 화합물을 처리하는 발효의 대체 작동 모드.

7. 항생물질의 증가는 발효시간 동안 해당 항생물질을 생산하여 플라스미드의 안정성을 나타냅니다.

8. 회분식 발효에 비해 별도의 특별한 장비가 필요하지 않습니다.

9. 페니실린과 같이 배지가 고갈되었을 때 최적의 수준으로 생성되는 특정 화학물질의 생산에 효과적인 방법이다.

1. 크로마토그래피와 같은 직접적인 방법으로는 공급 기질의 농도를 측정할 수 없습니다.

2. 미생물에 대한 귀중한 분석이 필요하다. 그것의 요구 사항과 생산성과 생리학에 대한 이해가 필수적입니다.

3. 발효 설정 및 공정 개발에 상당한 작업자 기술이 필요합니다.

4. 순환식 유가식 배양에서 독소가 억제 수준까지 축적되지 않고 많은 주기가 실행되는 경우 유가식 배지에 포함되지 않은 영양소도 제한되도록 공정 설계에 주의를 기울여야 합니다. 비생산 또는 저생산 변이체가 축적될 수 있습니다.

5. 제어할 구성 요소의 양은 사용 가능한 측정 장비의 감지 한계 이상이어야 합니다.

세포를 재활용하는 유가식은 에탄올 발효 및 폐수 처리와 같은 특정 목적에도 사용할 수 있습니다.

현재 다음과 같은 제품이 유가식 배양 방식으로 생산되고 있습니다.

1. 제빵용 효모 생산.

3. Streptomyces laurentii에 의한 티오스트렙톤 생산

4. 산업용 효소, 히스티딘, 글루타티온(Brevibacterium flavum), 라이신(Corynebacterium glutamicum) 생산

1. 억제효과를 피하는데 용이하다.

2. 유기체의 성장률과 O를 제어합니다.2 요구 사항.

3. 바이오매스 및 비제한적 영양 기질 모두의 농도를 일정하게 유지합니다.

4. 생산 단계는 통제된 조건에서 연장될 수 있으며 빠르게 대사되는 억제성 기질의 사용과 관련된 문제를 극복할 수 있습니다.

5. 성장률의 변화는 최적의 제품 합성의 기회를 제공할 수 있습니다.

6. 점도 문제 또는 고농도에서의 독성 극복을 용이하게 합니다.

유형 # 4. 혐기성 발효:

산소가 없는 상태에서 발효하는 과정을 혐기성 발효라고 합니다. 혐기성 미생물에는 절대 혐기성 미생물과 통성 혐기성 미생물의 두 가지 유형이 있습니다. Clostridium sp.와 같은 전자. 산소를 견딜 수 없거나 산소가 없을 때만 활성 상태를 유지합니다.

그들은 산소가 없을 때 활성 상태를 유지하고 원하는 제품의 최적량을 생산합니다. 유산균과 같은 통성 혐기성 세균은 소량의 산소를 견딜 수 있습니다. 그러나 효모와 같은 특정 유기체는 혐기성 조건이 생성되기 전에 높은 세포 수율을 구축하기 위해 초기 통기가 필요합니다.

발효기의 혐기성 조건은 배기 펌프에 의해 헤드 스페이스에 존재하는 산소를 회수하고 질소, 아르곤 등과 같은 일부 불활성 가스를 펌핑하거나 이산화탄소 또는 수소와 같은 특정 가스의 출현으로 배출함으로써 생성됩니다. 그림 2.4).

고정 매체 및 점성 매체는 또한 혐기성 조건을 생성합니다. 때로는 혐기성 조건을 만들기 위해 멸균 직후 발효기 바닥에 배지를 접종합니다.

1. 혐기성 발효 중 이산화탄소 및 수소 가스와 같은 경제적으로 가치 있는 부산물을 생산하여 제조업체에 일부 이익을 가져올 수 있습니다.

1. 제조업체는 혐기성 조건을 시행하기 위해 배기 펌프와 같은 추가 조항을 발효기에 제공하는 데 더 많은 돈을 지출해야 할 수 있습니다.

2. 특정 고가의 약품을 준비해야 하는 점성 매체와 같은 특수 매체가 필요합니다.

유형 # 5. 호기성 발효:

산소가 있는 상태에서 발효하는 과정을 호기성 발효라고 합니다. 대부분의 상업적 공정과 인간 유틸리티 제품의 대부분은 이러한 유형의 발효에 의해 생산됩니다.

발효는 표면 배양 또는 정적 및 침지일 수 있습니다.

유형 # 6. 표면 발효:

표면 발효는 기질이 고체 또는 액체일 수 있는 것입니다. 유기체는 기질에서 자라며 기질에서 영양분을 끌어옵니다. 이러한 유형의 발효는 제품이 포자 형성을 기반으로 하는 경우 바람직합니다. 그러나 그것은 유기체를 산소와 영양소의 불평등한 조건에 노출시키는 것과 같은 몇 가지 단점을 가지고 있습니다.

유형 # 7. 침지 발효:

침지 발효는 영양 기질이 액체이고 유기체가 기질 내에서 자라는 발효입니다. 배양 조건은 스파저와 임펠러 블레이드의 도움으로 균일하게 만들어집니다. 대부분의 산업 발효는 이러한 유형입니다. 액체 상태의 기질과 그러한 매체를 국물이라고도합니다.

유형 # 8. 고체 기질/상태 발효:

고체 상태(기질) 발효(SSF)는 일반적으로 자유수가 없거나 거의 없는 상태에서 습한 고체 물질에서 미생물이 성장하는 것으로 정의됩니다. 최근 몇 년 동안 SSF는 여러 생물 공정 및 제품 개발에서 많은 가능성을 보여 주었고 SSF는 고체 발효 또는 고체 기질 발효로 모호하게 사용되었습니다.

그러나 두 프로세스를 구별하는 것이 적절합니다. 고체 기질 발효는 기질 자체가 자유수가 없거나 거의 없을 때 발생하는 탄소원으로 작용하는 공정만을 정의하는 데 사용해야 합니다. 한편, 고상 발효는 상기와 같은 천연 기질 또는 고체 지지체로 사용되는 불활성 기질을 사용하는 발효이다. 고체 기질 발효는 일반적으로 여러 단계 과정을 포함합니다.

SSF는 오랜 역사를 가지고 있으며 주요 이벤트 중 일부는 표 2.4에 정확합니다.

고체 상태와 침지 발효의 비교는 표 2.5에 나와 있습니다.

폭기 및 교반의 필요성에 따라 SSF는 두 그룹으로 나눌 수 있습니다.

(a) 교반 없이 발효.

(b) 간헐적 또는 지속적인 교반과 함께 발효.

두 번째 그룹은 다음과 같이 더 나눌 수 있습니다.

(i) 강제 통기 없이 가끔 교반하면서 발효.

(ii) 강제 교반과 함께 느린 연속 교반을 통한 발효.

(iii) 종종 기계적, 화학적 또는 생물학적 처리가 필요한 기질의 전처리.

(iv) 다당류 및 단백질과 같은 고분자 기질의 가수분해.

(v) 가수분해 생성물의 활용.

(vi) 최종 제품의 분리 및 정제.

(vii) 간헐적인 교반과 강제 통기를 통한 발효.

(viii) 느린 연속 교반 및 강제 통기를 통한 발효.

여러 유형의 발효기가 고체 상태 발효에 사용되었습니다. 실험실 연구는 일반적으로 플라스크, 비커, 루병, 페트리 접시, 유리병 및 기둥에서 수행되었습니다. 기질 오토클레이브 후에 접종물을 추가하고 교반 및 통기 없이 배양합니다.

대규모 SSF 바이오프로세스의 경우 세 가지 유형의 발효기가 작동 중입니다.

기본적으로 회전 장치와 공기 순환 장치가 장착된 드럼형 용기로 구성됩니다(그림 2.15a).공기 유입 파이프는 바닥 또는 중앙과 평행하게 작동하거나 드럼의 전체 길이에 걸쳐 여러 지점에서 분기되어 일반적으로 강제 통기에 의해 달성되는 공기 분배를 촉진하여 발효 기질의 혼합을 달성할 수 있습니다. 이러한 유형의 발효기에서 미생물의 성장은 트레이 발효기보다 더 우수하고 균일한 것으로 간주됩니다.

트레이 발효기는 가장 단순하며 목재, 금속 또는 플라스틱 재료를 사용하여 만들 수 있습니다. 트레이 바닥은 기질을 잡고 통기를 허용하는 방식으로 천공됩니다(그림 2.15b). Kofi 발효는 전통적으로 트레이 발효기에서 수행되었습니다. 그러나 트레이 발효기는 넓은 작업 영역과 노동 집약적 인 작업이 필요합니다. 그들의 디자인은 쉽게 기계적 취급으로 이어지지 않습니다. 기질은 별도의 살균이 필요합니다.

컬럼 발효기는 양쪽 끝에 뚜껑이 있는 유리 또는 플라스틱 컬럼으로 구성됩니다. 발효 기질의 온도를 제어하기 위해 물 순환을 위한 재킷이 장착될 수 있습니다. 또는 전체 컬럼을 온도 조절 수조에 넣을 수 있습니다. 일반적으로 공기는 아래에서 위로 순환됩니다(그림 2.15c).

컬럼은 편의에 따라 수직 또는 수평이 될 수 있습니다. 베드 반응기는 가습된 공기가 기질로 펌핑되고 ​​사용된 폐가스는 기질 입자의 접착 및 응집을 방지하기 위해 강제 공기와 함께 연속 교반이 제공되는 출구를 통해 나가는 설계가 간단합니다. 이러한 시스템은 동물 사료용 바이오매스 생산에 매우 유용합니다.

고체 기질 발효와 관련된 미생물은 0.7까지 비교적 낮은 수분 활성도를 견디는 미생물입니다. 그들은 버섯 생산과 같은 단일 재배 형태로 사용될 수 있습니다. 아가리쿠스 비스포루스. 이중 문화 예. Chaetomium cellulolyticum 및 Candida tropicalis를 사용한 짚 전환. 미생물이 고유하거나 혼합 스타터 배양으로 추가될 수 있는 사일리지의 합성 및 준비에 사용되는 혼합 배양.

일부 발효의 경우 SSF는 다음과 같은 이유로 바람직합니다.

1. 여러 생산품에서 고체 배양 공정에서 생성물 형성이 우수한 것으로 밝혀졌습니다.

2. 2차 대사산물 생산에 가장 일반적으로 사용되는 미생물은 균류와 방선균이며 이러한 유기체의 균사체 형태는 고체 및 불용성 기질에 대한 침습적 성장에 이상적입니다.

3. 곰팡이 형태는 대규모 침지 과정에서 상당한 어려움을 초래합니다. 여기에는 점성이 높은 비뉴턴 브로스와 거품 생산이 포함됩니다. 그 결과 혼합 및 산소 전달을 위한 매우 높은 전력 요구 사항이 발생합니다. 발효액에 화학적 소포제가 있으면 산소 전달 효율이 떨어지고 제품 회수에 문제가 생길 수 있습니다.

4. 일부 공정에서는 동물 사료의 항생제와 같이 최종 제품이 고체 형태로 필요합니다.

5. 전체 생산 공정의 자본 비용이 현저히 적습니다.

6. 아플라톡신 B와 같은 특정 2차 대사산물의 수율1 및 액체 배양에서 얻은 오크라톡신 A는 매우 불량한 것으로 밝혀졌다. 이로 인해 SSF를 사용하여 진균독소(100g)의 더 높은 수율을 얻을 수 있었습니다.

7. 이 균류는 균사체 끝에 엄청난 팽창압을 가지고 있습니다.

8. 미생물 세포는 고체 기질 입자에 부착되어 균사체 웹에서 입자를 완전히 둘러쌉니다.

9. 최적의 양의 물을 제공합니다(a) 성장을 위해.

10. 유기체가 고농도의 금속 이온 및 미네랄 이온을 견딜 수 있으므로 조질 기질을 사용할 수 있습니다.

11. 이화 산물 억제를 극복하고 높은 기질 농도를 제공할 수 있습니다.

12. 효소는 SMF에서 세포외로, 그렇지 않으면 세포내로 됩니다. 예: 갈락타아제, 탄나아제 및 인버타아제.

13. 대사산물 생산 단계가 길다.

14. 탄수화물과 프로테아제의 공동 생산.

15. 이것에 의해 생성된 효소는 더 나은 특성과 추가로 바람직한 성분을 가질 것입니다.

16. 짚의 발효는 비용이 많이 드는 원심분리 및 탈수를 제거합니다.

17. 자본 및 반복 지출 감소.

18. 낮은 폐수 출력/더 적은 물 필요.

19. 에너지 요구량 감소.

20. 거품 형성의 부재.

23. 더 간단한 발효 배지.

24. 발효 공간이 적습니다.

25. 발효 매개변수의 엄격한 제어 부재.

27. 소규모로도 사용이 가능하여 경제적입니다.

28. 오염 제어가 용이합니다.

29. 발효 고형물을 직접 사용하는 경우의 적용 가능성.

30. 건조된 발효물의 보관.

31. 다운스트림 처리 비용 절감

SSF에 의해 생산되는 일부 물질은 표 2.6에 정리되어 있습니다.


이론

발효에서 일어나는 화학 반응은 아주 쉽게 설명할 수 있습니다. 전분은 자당, 포도당과 같은 단순당으로 전환됩니다. 그런 다음 이러한 당은 알코올(에틸 알코올)과 이산화탄소로 전환됩니다. 이 설명은 발효 과정 자체의 복잡성을 적절하게 전달하지 못합니다. 1930년대에 두 독일 생화학자 Gustav Embden(1872 – 1933)과 Otto Meyerhof(1884 – 1951)는 포도당이 발효되는 반응의 순서를 알아냈습니다. 해당 과정은 때때로 Emden-Myerhof 경로라고 합니다.

일련의 12가지 반응에서 포도당은 에틸 알코올과 이산화탄소로 전환됩니다. 이 일련의 반응을 수행하려면 많은 효소가 필요하며, 그 중 가장 중요한 것은 효모 세포에서 발견되는 자이마제입니다. 이 효소는 그들이 살고 있는 환경 조건에 민감합니다. 알코올 농도가 약 14%에 도달하면 비활성화됩니다. 이러한 이유로 어떤 발효 제품(와인과 같은)도 약 14% 이상의 알코올 농도를 가질 수 없습니다.

발효로 생산할 수 있는 알코올 음료는 주로 발효되는 식물과 발효에 사용되는 효소의 두 가지 요인에 따라 크게 다릅니다. 인간 사회는 물론 그들이 사용할 수 있는 재료를 사용합니다. 따라서 다양한 사람들이 포도, 장과, 옥수수, 쌀, 밀, 꿀, 감자, 보리, 홉, 선인장 주스, 카사바 뿌리 및 기타 식물 재료를 발효에 사용했습니다. 이러한 반응의 산물은 다양한 형태의 맥주, 와인 또는 증류주이며, 출처에 따라 특정 이름이 지정될 수 있습니다. 예를 들어 일본에서는 청주를 술이라고 합니다. 꿀로 만든 포도주를 미드라고 합니다. 맥주는 보리, 홉 및/또는 맥아당의 발효 산물입니다.

인류 역사 초기에 사람들은 자연적으로 발생하는 효모를 발효에 사용했습니다. 이러한 반응의 산물은 “ 야생 ” 효모에서 발생할 수 있는 효소에 따라 다릅니다. 오늘날 포도주 양조업자는 발효의 정확한 방향을 제어하는 ​​다양한 특수 배양 효모 중에서 선택할 수 있습니다.

에틸 알코올은 발효의 유일한 유용한 산물이 아닙니다. 발효 중에 생성되는 이산화탄소는 많은 제빵 제품의 중요한 구성 요소이기도 합니다. 예를 들어, 빵 반죽을 섞을 때 소량의 설탕과 효모가 첨가됩니다. 상승 기간 동안 설탕은 효모의 효소에 의해 발효되어 이산화탄소 가스가 형성됩니다. 이산화탄소는 발효 과정 없이는 부족할 반죽 부피와 질감을 제공합니다.

발효는 지금까지 설명한 것 외에도 많은 상업적 응용이 있습니다. 많은 것은 식품 준비 및 가공 산업에서 발생합니다. 생올리브, 오이, 양배추에서 각각 올리브, 오이피클, 소금에 절인 양배추를 생산하는 데 다양한 박테리아가 사용됩니다.

핵심 용어

활력 — 살아있는 유기체에서 발견되는 화합물이 무생물에서 발견되는 화합물과 본질적으로 어떻게든 다르다는 개념.

폐수 — 개인, 도시 및 산업 운영의 폐기물을 운반하는 물.

정확히 올바른 박테리아와 올바른 조건(예: 산도 및 염도 농도)을 선택하는 것은 원하는 향미를 지닌 식품을 생산하는 기술입니다. 식품 과학의 흥미로운 연구 라인은 석유의 발효에 의한 식용 식품의 생산을 목표로 합니다.

어떤 경우에는 상업적으로 효율적인 다른 방법을 사용할 수 없는 경우 항생제 및 기타 약물을 발효로 제조할 수 있습니다. 예를 들어, 중요한 약물인 코르티손은 디오스게닌으로 알려진 식물성 스테로이드의 발효에 의해 준비될 수 있습니다. 반응에 사용되는 효소는 곰팡이에 의해 제공됩니다. Rhizopus nigricans.

발효의 가장 성공적인 상업적 응용 중 하나는 가소홀에 사용하기 위한 에틸 알코올의 생산이었습니다. Gasohol은 약 90%의 가솔린과 10%의 알코올의 혼합물입니다. 이 제품에 필요한 알코올은 농업 및 생활 폐기물의 발효에서 얻을 수 있습니다. 가소홀의 사용은 재생 불가능한 자원(가솔린)의 가용성을 확장하기 위해 재생 가능한 자원(식물 재료)을 사용하는 유망한 방법을 제공합니다.

발효 공정의 또 다른 적용은 폐수 처리입니다. 활성 슬러지 공정에서는 호기성 박테리아를 사용하여 폐수 내 유기물을 발효시킵니다. 고형 폐기물은 이산화탄소, 물 및 무기염으로 전환됩니다.


유산균: 식품에서의 의미와 활동

비록 LAB가 혈청학적 기술과 16S 리보솜 RNA 목록화에 의해 계통발생학적으로 관련이 있는 것으로 나타났지만 용어 유산균(LAB)은 엄격한 분류학적 의미가 없습니다. 그들은 여러 가지 공통된 특징을 공유합니다. 그들은 그람 양성, 비포자 형성 간상체 또는 구균이며 대부분 사이토크롬과 포르피린이 결핍되어 카탈라아제 및 산화효소 음성인 공기 내성 혐기성균입니다.

일부는 플라보단백질 산화효소의 매개를 통해 산소를 흡수하며 이것은 과산화수소를 생성하거나 당의 탈수소화 중에 생성된 NADH를 재산화하는 데 사용됩니다. 세포 에너지는 주로 젖산을 생산하기 위한 탄수화물의 발효에서 파생됩니다.

이를 위해 그들은 두 가지 다른 경로 중 하나를 사용하며 이는 분류에 유용한 진단 기능을 제공합니다(그림 9.1). Homofermenters는 포도당 발효에서 거의 단일 제품으로 젖산염을 생산합니다.

그들은 Emden-Meyerhof-Parnas(EMP) 해당 경로를 따라 6탄소 분자 포도당이 인산화되고 이성질화되어 효소 알돌라제에 의해 글리세르알데히드-3-포스페이트로 절단됩니다.

그런 다음 이것은 피루브산으로 전환되는 동안 ATP가 두 부위에서 기질 수준 인산화에 의해 생성되어 발효된 모든 포도당 분자에 대해 2분자의 ATP의 전체 수율을 제공합니다. 글리세르알데히드-3-포스페이트의 산화에 소모된 NAD+를 재생하기 위해 NADH를 이용하여 피루브산을 젖산으로 환원시킨다.

이종 발효기는 포도당으로부터 대략 동몰량의 젖산염, 에탄올/아세트산염 및 이산화탄소를 생성합니다. 그들은 알돌라아제가 부족하고 산화 및 탈탄산 반응을 포함하는 순서에 의해 6탄당인 포도당을 오탄당인 리보오스로 변형시킵니다. 오탄당은 phosphoketolase라는 효소에 의해 glyceraldehyde phosphate와 acetyl phosphate로 분해된다.

인산삼당은 해당과정에서 발생하는 동일한 반응 순서에 의해 젖산으로 전환되어 두 분자의 ATP를 생성합니다. 아세틸 포스페이트의 운명은 사용 가능한 전자 수용체에 따라 다릅니다. 대안이 없을 때 아세틸 포스페이트가 이 역할을 수행하고 NADH에서 두 분자의 NAD+를 재생하는 동안 에탄올로 환원됩니다.

산소가 있는 상태에서 NAD+는 NADH 산화효소와 과산화효소에 의해 재생되어 아세틸 포스페이트를 아세테이트로 전환할 수 있습니다. 이것은 기질 수준 인산화를 위한 또 다른 부위를 제공하고 분해된 포도당 분자당 1분자에서 2분자 ATP로 이종 발효의 전체 ATP 수율을 증가시킵니다.

이것이 가능하면 ATP의 증가된 수율은 더 빠른 성장률과 더 높은 어금니 성장 수율에 반영됩니다. 다른 전자 수용체, 예를 들어 만니톨로 환원되는 과당으로도 동일한 효과를 얻을 수 있습니다. 이종 발효기와 호모 발효기는 포도당 함유 배지에서 이산화탄소를 생성하는 이종 발효기의 능력으로 실험실에서 쉽게 구별할 수 있습니다.

유산균의 주요 속은 표 9.4와 같다. 락토바실러스는 계통발생학적으로 매우 이질적인 것으로 인식되며 이는 속 내에서 나타나는 광범위한 %GC 값에 의해 입증됩니다.

일부 non-acidoduric, heterofermentative lactobacilli는 최근 Carnobacterium이라는 새로운 속으로 재분류되었으며 앞으로 이 속의 상당한 추가 개선이 있을 가능성이 있습니다.

현재 유산균은 절대 호모 발효기, 통성 이종 발효기 및 절대 이종 발효기의 세 그룹으로 나뉩니다. 절대 호모 발효기는 Orla-Jensen 분류 체계의 Thermo bacterium 그룹에 대략 해당하며 Lb와 같은 종을 포함합니다. acidophilus, Lb. 델브루키와 Lb. 헬베티쿠스.

육탄당은 거의 독점적으로 젖산으로 발효되지만 오탄당은 발효할 수 없습니다. 통성 이종 발효기는 EMP 경로를 통해 육탄당을 젖산으로 발효하지만 오탄당을 젖산과 아세트산으로 발효시킬 수 있는 유도성 포스포케톨라아제를 가지고 있습니다.

그들은 Lb와 같은 식품 발효에 중요한 일부 종을 포함합니다. 발바닥, Lb. 카세이, 그리고 Lb. 때문. Lb를 포함하는 절대 이종 발효기. 브레비스, Lb. 발효 및 Lb. kefir는 6탄당 발효를 위해 포스포케톨라제 경로를 사용합니다.

Leuconostoc은 그 구성원이 일반적으로 불규칙한 구균이기 때문에 형태학적으로 별도의 속으로 취급됩니다. 예를 들어 Lactobacillus confuses가 원래 Leuconostoc으로 분류되었던 것과 같이 "짧은 막대가 언제 구균이 되는가?"라는 성가신 질문이 있기 때문에 이것은 완전히 만족스럽지 않습니다.

류코노스톡을 대부분의 이종발효성 유산균과 구별하는 것은 d-락테이트만 생산하는 것과 아르기닌에서 암모니아를 생산할 수 없다는 두 가지 특성으로 구분할 수 있습니다.

Pediococcus 속에는 P. pentosaceus와 같은 식품 발효에 중요한 종도 포함되며, 꽤 최근까지 P. halophilus는 현재 Tetragenococcus halophilus라는 속으로 속합니다. 연쇄상구균에 대한 핵산 연구는 그들이 속 상태에 합당한 3개의 별개의 그룹으로 구성되어 있음을 보여주었습니다.

Lancefield’의 고전적인 혈청학적 분류 체계에 사용된 그룹 D 항혈청과도 반응하는 S. bovis 및 S. equinus의 대변 균주는 포함되지 않았지만 장구균은 이제 Enterococcus 속을 형성합니다.

Lancefield’s 그룹 N 연쇄상 구균으로 알려진 젖산 또는 유제품 연쇄상 구균은 현재 Lactococcus 속의 구성원이며 별개의 연쇄상 구균 종으로 간주되었던 이들 중 다수가 이제 Lactococcus lactis의 아종으로 분류됩니다. 요구르트 스타터 Streptococcus salivarius subsp. thermophilus는 Group N 항원을 보유하지 않고 Streptococcus 속에 남아 있습니다.

일부 저자는 유산균 중에 Bifidobacterium을 포함하기도 하지만 계통발생학적으로나 생화학적으로 매우 구별되기 때문에 정당성이 덜합니다. 예를 들어, 비피도박테리아에 의한 육탄당 발효는 EMP 해당 경로나 포스포케톨라제 경로를 따르지 않지만 아세트산과 젖산의 혼합물을 생성합니다.

식품 내 유산균의 활동:

1. 유산균의 항균활성:

유산균은 다른 미생물을 억제하는 경우가 많으며 이는 많은 식품의 품질과 안전성을 유지하는 능력의 기초가 됩니다. 이러한 억제에 기여하는 주요 요인은 표 9.5에 나와 있습니다. 지금까지 가장 중요한 것은 젖산과 아세트산의 생성과 그에 따른 pH 감소입니다.

박테리오신은 일반적으로 생산 유기체와 밀접하게 관련된 종에 대해 활성인 살균 펩티드 또는 단백질입니다. 유산균에 의한 박테리오신 생산은 최근 몇 년 동안 광범위하게 연구되어 왔으며 많은 것이 기술되었습니다.

이들에 대한 관심은 식품 등급 유기체에 의해 생산되고 따라서 ‘천연’로 간주될 수 있고 따라서 식품 방부제로 더 허용될 수 있다는 사실에서 비롯됩니다. 많은 유망한 후보자가 발견되었지만 다른 많은 후보자는 활동 범위가 너무 제한되어 실질적인 유용성이 없습니다.

현재까지 식품 산업에서 응용할 수 있는 유일한 박테리오신은 특정 Lactococcus lactis 균주에 의해 생산되는 nisin입니다. 영국과 일부 다른 국가에서는 1950년대 초부터 식품 방부제로 사용되어 왔지만 1988년에 더 최근에 USFDA 승인을 받았습니다.

그것은 그람 양성균에 대해 비교적 넓은 범위의 활성을 가지며, 열 충격 또는 EDTA와 같은 킬레이트제로 처리하여 외막이 손상된 경우 일부 그람 음성균에 대해서도 활성을 나타내는 것으로 나타났습니다.

박테리아 포자는 특히 민감하며 주요 용도는 가공 치즈 및 통조림 식품과 같은 제품에서 증식을 억제하는 것입니다. 영양성 박테리아에서는 세포질 성분의 누출과 막횡단 전위의 붕괴가 있는 원형질막에 기공을 생성함으로써 작용하는 것으로 나타났습니다.

Nisin은 34개의 아미노산을 포함하는 폴리펩타이드로 산성 pH에서 열에 매우 안정적입니다. 그것은 lantibiotics로 알려진 항생제 그룹에 속하며 대부분 비유산균에 의해 생성되며 lanthionine(3,3′-thiodialanine) 및 β-methyl lanthionine( 그림 9.2).

이들은 pre-pro-peptide에 대한 일련의 번역 후 변형에 의해 생성되며, 이는 리더 펩티드를 제거하기 위해 절단됩니다. 많은 박테리오신의 생산은 플라스미드 암호화 기능인 것으로 보이지만 nisin을 암호화하는 유전자는 염색체 및 플라스미드 DNA 모두에서 복제되고 시퀀싱되었습니다.

니신 생산 능력을 선택된 스타터 유기체에 도입하는 것은 다른 그람 양성균과의 경쟁을 통제해야 하는 일부 발효 식품에서 유용할 수 있지만, 니신 생산이 유산균을 억제할 수 있는 치즈 제조에서는 바람직하지 않습니다. 치즈 숙성.

과산화수소는 항균 특성으로 잘 알려져 있습니다. 유산균은 많은 플라보단백질 산화효소를 가지고 있지만 분해효소 카탈라아제가 없기 때문에 산소가 있는 상태에서 과산화수소를 생성합니다. 이것은 다른 박테리아보다 효과에 덜 민감한 것으로 나타났기 때문에 일부 경쟁 우위를 제공할 것입니다.

일부 발효 식품에서 과산화수소 축적이 입증되었지만 그 효과는 일반적으로 미미할 것 같습니다. 젖산 발효는 본질적으로 혐기성 과정이므로 과산화수소 형성은 발효 시작 시 기질에 용해된 산소의 양에 의해 제한됩니다.

그러나 발효의 이 중요한 초기 단계에서 과산화수소 생산이 중요한 추가적인 선택적 이점을 제공할 수 있습니다.우유에서 과산화수소는 lacto-peroxidase 항균 시스템을 강화하는 것으로 알려져 있습니다.

Heterofermentative LAB은 잘 정립된 또 다른 항균제인 에탄올을 생산합니다. 젖산발효제품의 농도는 일반적으로 낮지만 경쟁자 억제에 어느 정도 기여할 수 있습니다.

에탄올과 같이 일부 상황에서 LAB에 선택적인 이점을 제공할 수 있는 다른 여러 요인이 있습니다. 그러나 대부분의 경우, 특히 LAB가 최대 약 100밀리몰의 양으로 젖산을 생산하고 pH가 3.5~4.5 범위에 있는 것과 비교할 때 이들의 기여는 무시할 수 있습니다.

2. 유산균의 건강증진 효과:

발효 식품은 일반 식품이 아닌 방식으로 인간의 건강에 긍정적으로 유익한 것으로 오랫동안 명성을 얻었습니다. 식세포 면역 이론의 러시아 창시자인 Ilya Metchnikoff는 자연의 부조화에 대한 이론을 바탕으로 이 아이디어를 초기에 옹호했습니다.

그는 대장 박테리아에 의한 장의 부패가 수명을 단축시키는 독소를 생성하기 때문에 인간의 대장은 그러한 부조화 중 하나라고 주장했습니다. 1908년에 출판된 그의 책 ‘The Prolongation of Life’에서 그가 옹호한 한 가지 해결책은 상당한 양의 산성 식품, 특히 요구르트를 섭취하는 것이었습니다.

그는 이러한 제품에 함유된 유산균의 항균 활성이 식품의 부패를 억제하는 것과 같은 방식으로 장내 세균을 억제할 것이라고 생각했으며 불가리아 농민의 명백한 장수는 요구르트 소비 때문이라고 생각했습니다.

그 이후로 유산균, 특히 발효유와 관련하여 많은 주장이 제기되었습니다(표 9.6). 그래서 식품으로 섭취되는 유산균(및 Bifidobacterium spp.와 같은 일부)의 살아있는 배양물을 종종 ‘프로바이오틱스’(그리스어: for life)라고 합니다.

그러나 이러한 추정상의 이점에 대해 사용할 수 있는 증거의 대부분은 현재 부적절하거나 모순되며 많은 것이 정의되지 않은 상태로 남아 있습니다.

여러 연구에서 젖산 발효의 결과로 주로 필수 아미노산 함량을 증가시켜 곡물의 영양가가 향상되었음을 보여주었습니다. 그러나 이러한 개선은 다양하고 균형 잡힌 식단을 가진 인구 집단에게는 미미한 중요성만 있을 수 있습니다.

또한 식물 제품의 발효는 시아노겐 배당체 및 피트산과 같이 함유할 수 있는 항영양 인자의 수준을 감소시키는 것으로 보고되었지만, 이러한 효과는 종종 미생물보다는 담그거나 분쇄하는 것과 같은 공정의 다른 측면의 결과입니다. 동작. 일부에서는 우유의 발효가 미네랄의 생체이용률을 증가시킨다고 주장했지만, 이는 논란의 여지가 있습니다.

유익한 효과에 대한 좋은 증거가 있는 한 영역은 유당 불내증으로 알려진 상태를 완화하는 발효유의 능력입니다. 모든 인간 영아는 유당 유당을 포도당과 갈락토스로 가수분해한 후 소장에서 흡수되는 락타아제(β-갈락토시다아제)라는 효소를 가지고 있습니다.

우유를 섭취할 때 이 효소가 없으면 유당은 소화되지 않고 결장으로 이동하여 유당 발효 유기체의 대규모 상주 개체군에 의해 공격을 받아 복부 불편함, 헛배부름 및 설사를 유발합니다. 북유럽 출신의 사람들과 일부 고립된 아프리카 및 인도 공동체만이 일생 동안 높은 수준의 장내 β-갈락토시다아제를 유지합니다.

대부분의 세계 인구에서 유년기 동안 소실되며 이로 인해 우유 섭취 및 관련 영양상의 이점이 배제됩니다. 그러나 락타아제가 결핍된 사람들이 요구르트와 같은 발효 형태로 우유를 섭취하면 이러한 부작용이 덜 심각하거나 아예 없습니다.

이것은 많은 요구르트가 신선한 우유와 동등한 유당 함량을 갖도록 유고형분으로 강화되기 때문에 단순히 제품의 유당 수치가 감소한 결과가 아닙니다. 저온 살균 요구르트가 유익한 효과를 나타내지 않기 때문에 생존 가능한 스타터 유기체에 β-갈락토시다아제가 존재하기 때문인 것으로 보입니다.

장에서 섭취한 세포는 담즙이 있을 때 더 투과성이 높아져 체내에서 유당의 가수분해를 돕게 됩니다. 장내 미생물총의 보호 역할은 이미 논의되었으며 섭취한 유산균이 이에 기여할 수 있다는 증거가 있습니다.

요구르트는 새끼 돼지의 위와 십이지장에서 대장균군 성장을 강력하게 억제하는 것으로 나타났으며 설사가 있는 인간 유아에 대한 연구에 따르면 요구르트를 제공한 그룹이 대조군보다 질병의 지속 기간이 더 짧은 것으로 나타났습니다.

그러나 요구르트의 일반적인 스타터 유기체인 Lactobacillus delbrueckii subsp. 불가리쿠스 및 스트렙토코커스 살리바리우스 아종. thermophilus는 담즙에 내성이 없으며 장을 식민지화하지 않습니다. 그들은 소화관에 남아 있으며 섭취되는 동안에만 대변으로 배출되므로 개선 효과는 일시적일 수 있습니다.

최근 락토바실러스 아시도필러스(Lactobacillus acidophilus)와 같은 유산균과 장에 서식할 수 있는 비피도박테리움 롱검(Bifidobacterium longum)과 같은 비피더스균에 대한 관심이 집중되고 있으며, 이러한 미생물은 요구르트 및 기타 발효유에 포함되어 있습니다.

장을 식민지화할 수 없는 LAB에 의한 생체 내 병원체 억제는 시험관 내에서 적용되는 것과 대체로 유사한 메커니즘에 의해 이루어져야 합니다. 장을 식민지화할 수 있는 유기체와 함께 장내 잠재적인 부착 부위의 차폐도 포함될 수 있습니다.

유산균은 면역 체계를 자극하는 것으로 보고되었으며 다양한 연구에서 대식세포와 림프구 및 세포를 활성화하고 면역글로불린 A(IgA) 수치를 개선하며 감마 인터페론 생산을 개선하는 능력이 설명되어 있습니다. 이러한 효과는 일부 동물 모델에서 주로 Lactobacillus acidophilus인 LAB에 대해 알려진 병원균 및 항종양 활성에 대한 숙주의 내성에 기여할 수 있습니다.

항종양 효과에 대해 제안된 추가 또는 대안 가능한 메커니즘은 LAB 섭취 시 대변에서 β-glucuronidase, azoreductase 및 nitro-reductase와 같은 효소의 활성 감소가 관찰되는 것입니다.

장내 세균총의 구성 요소에 의해 생성되는 이 효소는 장에서 발암성 물질을 발암성 물질로 전환할 수 있으며 이들의 감소된 활성은 아마도 LAB에 의한 생성 유기체의 억제 때문일 것입니다.

높은 수준의 혈청 콜레스테롤은 관상 동맥 심장 질환의 소인으로 설정됩니다. 발효유 섭취가 콜레스테롤 저하 작용을 하는 것으로 제안되었으며 일부에서는 이것이 일어날 수 있는 다양한 메커니즘을 제안했습니다. 그러나 현재로서는 증거가 약하고 이 부분에 대해서는 더 많은 연구가 필요합니다.

3. 말로락트 발효:

LAB는 malo-lactic 발효로 알려진 반응에서 L-malic acid를 탈탄산시켜 L-lactate를 생성할 수 있습니다(그림 9.3). 이 과정은 특히 사과산이 전체 산의 절반까지 형성할 수 있는 와인과 관련이 있으며 그 효과는 와인의 산도를 상당히 줄이는 것입니다.

자연적으로 높은 산도를 갖는 경향이 있는 서늘한 지역의 와인에서 특히 권장되며 따뜻한 지역의 와인에서는 덜 바람직하지만 병에 담긴 제품에 세균학적 안정성을 제공하기 위해 종종 촉진됩니다. 그것은 또한 와인의 바디와 풍미를 수정하고 향상시킬 수 있습니다.

천연 젖산 발효는 새 포도주에 황화를 입히지 않고 평소보다 더 오래 효모 찌꺼기(침전물)에 두면 촉진될 수 있습니다. 상업적인 스타터 배양은 일반적으로 Leuconostoc oenos 균주로 구성되어 있습니다.

최근까지 LAB이 이 반응을 수행함으로써 어떤 이점을 얻는지는 불분명했습니다. 기질 수준의 인산화가 일어나지 않으며(따라서 엄밀히 말하면 발효라고 하는 것이 옳지 않음) 탈탄산 반응의 자유 에너지가 낮습니다.

이제 반응은 말산염, 젖산염 및 양성자의 수송에 의해 세포막을 가로질러 생성된 양성자 원동력을 통해 에너지를 보존하는 것으로 보입니다.


요구르트의 제조공정

백슬로핑

추가된 배양물은 성장판을 사용하여 분리하거나 back-slopping이라고 하는 이전 배치에서 가져올 수 있습니다[5]. 상업적으로 발효를 시작하는 기본 방법은 초기에 원하는 미생물의 수가 많을 뿐만 아니라 더 빠른 발효를 보장할 뿐만 아니라 더 신뢰할 수 있는 제품을 제공하기 때문입니다[5]. 이 과정은 또한 같은 종의 성장을 보장하는 항균 물질을 방출하는 박테리아의 성장을 촉진하는 동시에 다른 종의 성장 가능성을 줄이고 최종 제품에 영향을 미칩니다[5].

발효 메커니즘 및 결과

사용된 스타터 배양액은 산성화 활성이 매우 좋기 때문에 유당 발효의 주요 결과는 젖산의 생성이며 이에 따라 pH가 낮아집니다[4]. ''NS. thermophilus'는 이 산성 효과를 상쇄하는 데 도움이 되는 우유의 요소로부터 암모니아를 생성하는 요소분해효소를 합성합니다[5]. 암모니아의 생성에도 불구하고 pH는 포유류 우유에서 발견되는 인단백질인 카제인의 등전점 이하로 떨어지고 산성 카제인이 침전되어 약한 산성 풍미를 갖는 고체를 형성합니다[4]. 최근에는 트랜스글루타미나제에 의한 카제인의 가교가 우유의 발효에 이용되고, 이는 겔 강도를 증가시키는 단백질 구조의 메쉬형 감소를 유발함으로써 카제인 및 유청 단백질을 변형시킨다[17]. 카제인 네트워크와 함께 엑소폴리사카라이드는 유산균에 의해 생성되며 요구르트가 걸쭉해지는 자연적인 방법입니다[18].


5. 결론

생명공학적 관련성과 식물에서 자원을 회수하기 위한 반추동물 생물학의 중요한 구성요소로서의 보급에도 불구하고, 혐기성 균류는 리그노셀룰로오스 분해 및 바이오연료 생산을 위한 플랫폼 유기체로서 상대적으로 탐구되지 않은 상태로 남아 있습니다. 확장 가능한 생물 반응기에서 자연적인 반추위와 후장 환경을 모방하는 것은 여전히 ​​어려운 과제입니다. 복잡한 리그노셀룰로오스 기질을 사용할 수 있는 강력하고 저에너지, 이종, 확장 가능한 공정의 개발은 바이오연료의 효과적인 공정 규모 생산에 중요합니다. AD 반응기를 제외하고 대부분의 생물 처리 전략은 성장 요구 사항이 매우 다른 호기성 미생물에 대해 잘 개발되고 최적화되었습니다. 그럼에도 불구하고, 이종 플랫폼에서 유전자를 생산하거나, 진균을 직접 유전적으로 조작하는 수단을 개발하거나, 기존의 용도를 변경하거나 새로운 생물 반응기 설계를 개발함으로써 혐기성 진균의 효소 시스템 및 대사를 이용할 수 있는 무한한 기회가 발생합니다. 이러한 작업은 잠재적으로 바이오 연료뿐만 아니라 지구상에서 가장 풍부하고 재생 가능한 공급원료 중 하나에서 플랫폼 분자를 생산할 수 있는 기회를 제공합니다.


인체의 다른 부분의 정상 미생물총

평균 성인 인간은 약 2m2의 피부로 덮여 있습니다. 이 표면적은 약 10 12 박테리아를 지원하는 것으로 추정되었습니다. 피부(그림 44.1) 표면(표피)은 주기적으로 건조되기 때문에 풍부한 미생물 성장에 유리한 장소가 아닙니다.

대부분의 피부 미생물은 아포크린샘(땀샘)과 직간접적으로 연관되어 있는데, 아포크린샘은 주로 겨드랑이와 생식기 부위, 유두, 배꼽에 발생하는 비서샘입니다. 겨드랑이 냄새는 아포크린 분비물의 박테리아 활동의 결과로 발생합니다.

유사하게, 각 모낭은 윤활액을 분비하는 피지선과 연관되어 있습니다. 모낭은 피부 표면 바로 아래 영역에 있는 미생물에게 매력적인 서식지를 제공합니다. 피부샘의 분비물에는 요소, 아미노산, 염류, 젖산, 지질 등의 미생물 영양소가 풍부합니다.

피부에 서식하는 미생물의 대표적인 속은 Acinetobacter, Enterobacter, Klebsiella, Corynebacterium, Micrococcus, Propionibacterium, Proteus, Pseudomonas, Staphylococcus, Streptococcus, Bacillus, Mycobacterium(때때로), Malassezia, Pityrosporum, 목록의 마지막 세 가지는 미세 균류입니다.

상주하는 미생물총은 다소 일정하게 유지되지만 다양한 요인이 정상적인 구성에 영향을 미칩니다.

이러한 요인은 다음과 같습니다.

(i) 피부 온도와 수분을 증가시켜 피부 미생물총의 밀도를 증가시킬 수 있는 날씨,

(ii) 영향을 미치는 숙주의 연령과 어린 아동은 성인보다 더 다양한 미생물총을 갖고 잠재적으로 병원성 그람 음성 박테리아를 보유하며,

(iii) 상주하는 미생물총에 영향을 미치는 개인 위생 및 부정한 개인은 일반적으로 피부의 미생물 밀도가 더 높습니다. 피부에서 생존할 수 없는 미생물은 일반적으로 피부의 낮은 수분 함량이나 낮은 pH로 인해 굴복합니다.

구강의 정상 미생물총:

구강(입)의 정상적인 미생물총은 기계적 제거에 저항하고 잇몸 및 치아와 같은 표면에 단단히 부착하는 능력을 가진 미생물로 구성됩니다.

입에 서식할 수 있는 정상적인 미생물 개체군은 영양분, 물, pH 및 온도의 적합성, 기타 많은 성장 인자의 존재로 인해 음식물 입자 및 상피 파편의 가용성으로 인해 매우 편안한 환경을 찾습니다.

구강이나 입에는 출생 당시에는 미생물이 전혀 없었지만, 사람이 태어난 후 몇 시간 이내에 주변 환경의 미생물에 의해 군집화됩니다. 처음에 입안에 서식하는 미생물 군집은 Streptococcus, Neisseria, Actinomyces, Veillonella, Lactobacillus 및 일부 효모에 속합니다. 이러한 초기 미생물은 호기성 미생물과 절대 혐기성 미생물입니다.

첫 번째 치아가 나올 때 치아와 잇몸 사이의 공간이 혐기성이므로 혐기성 형태(예: Porphyromonas, Prevotella, Fusobacterium)가 우세합니다. 나중에 Streptococcus spp. 치아의 법랑질 표면에 도달하고 또한 상피 표면에 부착되어 타액을 집락화합니다.

이러한 박테리아의 존재는 치태, 치아 우식증, 치은염(잇몸 조직의 염증) 및 치주 질환(조직 및 뼈의 파괴)의 최종 형성에 기여합니다.

호흡기의 정상 미생물총:

호흡기(그림 44.2)는 상기도와 하기도로 구분된다. 호흡기는 코와 비인두, 인두, 인후로 구성되어 있고 하기도는 기관, 기관지, 폐로 구성되어 있습니다.

1. 상부 호흡기:

코의 정상적인 미생물총은 콧구멍 바로 안쪽에서 발생하며, 포도상구균, 연쇄상구균, 나이세리아, 헤모필루스 등으로 구성되어 있습니다. 이 중 S. aureus와 S. spider-midis는 주로 피부와 거의 같은 수로 발생합니다. 얼굴.

연구개 수준 위에 있는 인두 부분인 비인두에는 일반적으로 잠재적인 병원성 박테리아(예: 폐렴 연쇄상 구균, 헤모필루스 인플루엔자, 나이세리아 메넨기티디스)가 소량 포함되어 있습니다. 디프테로이드는 코와 비인두 모두에서 일반적으로 발생합니다.

연구개와 후두개 위쪽 가장자리 사이에 있는 인두 부분인 구인두에는 연쇄상구균(예: S.oralis, S. melleri, S. gordonii), 다수의 디프테로이드, Branhamella catarrhalis 및 Neisseria menengitidis가 포함되어 있습니다.

2. 하부 호흡기:

하기도(기관지, 기관지 및 폐)에는 호흡하는 동안 잠재적으로 이 영역에 도달할 수 있는 많은 미생물에도 불구하고 상주하는 미생물총이 없습니다. 상당히 큰 먼지 입자는 상부 호흡기에 가라앉습니다. 공기가 하기도로 통과함에 따라 유속이 현저하게 감소하고 미생물이 통로의 벽에 정착합니다.

전체 호흡 기관의 벽은 섬모 상피가 늘어서 있고 섬모는 위쪽으로 뛰면서 박테리아 및 기타 미립자 물질을 상부 호흡기로 밀어 넣은 다음 타액과 비강 분비물로 배출됩니다. 직경이 약 10μm보다 작은 입자만 폐에 도달합니다.

위장관의 정상 미생물총:

음식이 소화되는 장소인 인간의 위장관은 위와 소장, 대장으로 구성됩니다. 인간의 위장관 식물상 구성은 상당히 다양하며 식단에 따라 다소 다릅니다.

편의상 고기를 많이 섭취하는 사람은 채식주의자보다 단백질 분해가 높은 박테로이데스 수치가 더 높고 대장균군과 유산균 수가 적습니다. 위장관에서 발견되는 대표적인 미생물의 속은 그림 44.3과 같다.

많은 미생물이 입에서 위로 세척되지만 위액이나 위액은 산성(pH 2-3 정도)이 높기 때문에 대부분이 죽습니다. 따라서 위액은 위를 미생물이 장으로 들어가는 화학적 장벽을 만듭니다.

그 결과, 위는 일반적으로 위액 1밀리미터당 생존 가능한 박테리아보다 적게 포함합니다. 위장에 존재하는 미생물은 주로 헬리코박터, 연쇄상구균, 포도상구균, 락토바실러스, 펩토스트렙토코커스 및 효모(예: 칸디다)입니다. 그러나 헬리코박터 파일로리(Helicobater pylori)와 같은 미생물은 민감한 인간 숙주에서 궤양을 유발할 수 있습니다.

소장은 해부학적으로 십이지장, 공장 및 회장의 세 영역으로 나뉩니다. 위장에 인접한 십이지장은 위의 산성액과 담즙 및 췌장 분비의 억제 효과가 결합되어 있어 상당히 산성이며 미생물(그람 양성 구균 및 간균)이 거의 포함되어 있지 않습니다. Lactobacilli diphtheroids, Enterococcus faecalis 및 Candida albicans(효모)가 공장에서 때때로 발생합니다.

소장의 원위부인 회장에서는 pH가 더 알칼리화되어 혐기성 그람음성균과 장내세균과의 구성원이 발생합니다.

3. 대장:

대장이나 결장은 인체에서 가장 많은 수의 세균 군집을 포함하고 있습니다. 대장 또는 결장은 발효 용기 역할을 하며, 그 미생물상은 주로 혐기성, 그람 음성, 무포자 박테리아와 그람 양성, 포자 형성 및 무포자 간균으로 구성됩니다.

통성 혐기성 균(예: 대장균)이 존재하지만 절대 혐기성 균에 비해 적은 수입니다. 완전 혐기성 균과 통성 혐기성 균의 비율은 약 300 대 1입니다. 절대 혐기성 균의 총 수는 대장입니다. 장 내용물의 10 10 -10 11 세포의 수가 정상입니다(박테리아는 장 내용물의 약 1/3을 구성합니다. 대변 ​​무게).

통성 호기성 미생물이 산소를 소비하여 대장의 환경을 엄밀하게 혐기성으로 만들기 때문입니다.박테리아 외에도 효모 칸디다 알비칸스와 특정 원생동물(예: Entamoeba hartmanni, Trichomonas hominis, Endoliniax nana, lodamoeba sp.)이 대장에서 공생할 수 있습니다.

4. 장내 미생물총의 대사 기여:

다양한 필수 대사 반응은 장내 미생물총에 의해 수행되며 그 결과 다양한 대사 산물이 형성됩니다(표 44.1).

장에서 생성되는 모든 비타민 중 비타민 B는12 그리고 K는 사람이 만드는 것이 아니라 장내 미생물에 의해 흡수되는 필수 비타민입니다. 스테로이드는 간에서 생산되어 담즙산으로 담낭에서 장으로 방출됩니다.

스테로이드는 장내 미생물총에 의해 다양한 대사 과정을 거쳐 활성 스테로이드 화합물로 변형되어 흡수된다. 표 44.1에 기재된 가스(위창) 및 악취 발생 물질은 발효균과 메탄생성균의 활동에 의해 발생합니다.

정상적인 성인은 매일 수백 밀리리터의 가스를 장에서 배출합니다. 장에서 발효 박테리아에 의해 대사되는 일부 식품은 수소(H2) 및 이산화탄소(CO2). 정상 성인의 1/3 이상의 장에서 발생하는 메탄 생성 물질은 H를 전환시킵니다.2 및 CO2 발효 미생물에 의해 생성된 메탄(CH4).

비뇨생식기(Genifourinary) 요로의 정상 미생물총:

방광 자체는 남성과 여성의 비뇨생식기 모두에서 무균 상태이지만, 요도를 둘러싸고 있는 상피 세포는 그람 음성 통성 호기성 구균 및 간균(예: 표피 포도상구균, 엔테로코커스 패칼리스, 코리네박테리움 종)에 의해 집락화되어 있습니다. 성인 여성의 생식기(질관)는 표면적이 넓고 점액 분비물이 많기 때문에 복잡한 미생물총을 가지고 있습니다.

그것은 약산성이며 상당한 양의 다당류 글리코겐을 포함합니다. Lactobacillus acidophilus(그림 44.4)는 글리코겐을 발효시켜 젖산을 생성하고 산성 상태를 유지합니다. 효모(Torulopsis 및 Candida 종), 연쇄상 구균 및 E. coli와 같은 다른 미생물도 존재할 수 있습니다. 질내 미생물총은 사춘기와 폐경기 사이에 끊임없이 변화합니다.

사춘기 이전에 여성의 질은 알칼리성이며 글리코겐을 생성하지 않으며 L. acidophilus는 없으며 식물상은 주로 포도상구균, 연쇄상 구균, 디프테로이드 및 대장균으로 구성됩니다. 폐경 후 글리코겐 생산이 중단되고 pH가 상승하며 식물상은 다시 사춘기 이전에 발견된 것과 유사합니다.


템페를 만드는 방법? | 발효식품 | 산업미생물학

Tempeh는 서양 과학자들이 광범위하게 조사한 유일한 동양 발효 제품입니다. 인도네시아가 원산지로 말레이시아와 인도네시아 등지에서 널리 소비되고 있으나 다른 곳에서는 알려지지 않았다. 인도네시아에서 템페(Tempeh) 또는 템페 케델레(Tempe kedelee)라고 불리는 것은 껍질을 벗긴 대두를 곰팡이로 발효시켜 만들어지며, Rhizopus 균사체는 대두 떡잎을 케이크 같은 제품으로 묶습니다.

신선한 템페는 깨끗하고 효모 냄새가 나지만 일부 사람들은 전체 대두에서 불쾌감을 느끼는 콩 맛이 없습니다. 기름에 튀기면 기분 좋은 맛과 향, 식감을 가지고 있어 서양인들에게도 친숙하고 수용도가 높습니다. 일반적으로 조미료나 조미료로 사용되는 대부분의 다른 발효 대두 식품과 달리 템페는 인도네시아에서 메인 요리와 육류 대용품으로 사용됩니다.

높은 단백질 함량과 보편적으로 수용 가능한 맛과 질감으로 인해 tem­peh는 잠재적인 저비용 단백질 공급원입니다. 템페 발효는 다소 간단하고 빠릅니다. 전통적으로 대두는 손으로 껍질을 쉽게 제거할 수 있을 때까지 밤새 수돗물에 담가둡니다. 어떤 사람들은 콩을 몇 분 동안 삶아서 껍질을 느슨하게 한 다음 밤새 콩을 담그는 것을 선호합니다.

껍질을 벗긴 후, 콩은 과량의 물로 삶아 물기를 뺀 다음 표면 건조를 위해 펼칩니다. 이전 발효에서 나온 작은 템페 조각 또는 라기 템페(상업용 스타터)를 대두와 섞은 다음 바나나 잎으로 싸서 실온에서 24~48시간 동안 콩이 흰색 균사체로 덮일 때까지 발효시킵니다. 케이크처럼 함께 묶였습니다. 케이크는 얇게 썰어 소금물에 담갔다가 코코넛 오일에 튀기거나 조각으로 잘라 수프에 사용합니다.

발효를 이해하고 균일하고 고품질의 제품과 잘 정의되고 경제적으로 실현 가능한 제조 공정을 개발하기 위해서는 생화학적 및 미생물학적 연구가 필요합니다. 1950년대 후반, 뉴욕주 제네바의 New York Agricultural Experiment Station과 Peoria III의 북부 지역 연구 센터의 과학자들은 이 백년 된 발효를 연구하기 시작했습니다.

그 결과 실험실 규모의 순수 배양 발효법이 개발되었습니다. 발효 중 대두의 변화와 템페의 영양가를 자세히 조사하였다. 템페 곰팡이의 생리학과 생화학도 연구했습니다. 최근에는 가정에서도 빵이나 요구르트 발효처럼 쉽게 템페 발효를 할 수 있도록 동결건조 템페 스타터가 개발됐다.

템페 발효에 사용된 곰팡이는 이전에 Rhizo­pus oryzae로 보고되었습니다. 우리는 인도네시아에서 다양한 템페에서 분리된 배양물을 받았고, 리조푸스만이 순수한 배양 발효에서 템페를 만들 수 있음을 발견했습니다.

접수된 Rhizopus 40종 중 25종은 R. oligosporus Saito이고 나머지는 R. stolonifer (Ehren) Vuill, R. arrhizus Fischer, R. oryzae Went and Geerligs, R. formosaensis Nakazawa, R. achlamydosporus Takeda입니다. 분명히 R. oligosporus는 인도네시아에서 템페 발효에 사용되는 주요 종입니다. R. oligosporus Saito NRRL 2710으로 확인된 균주는 좋은 제품을 더 잘 생산하는 종 중 하나입니다.

이 균주는 어떠한 성장 조건에서도 줄무늬가 없고 형태가 매우 불규칙한 포자낭포자를 특징으로 합니다. 포자낭은 짧고 가지가 없으며, 길이와 가지가 훨씬 줄어든 가근과 마주한다. 모든 분리주는 많은 수의 클라미도포자를 보여줍니다.

R. oligosporus Saito NRRL 2710에 의한 다양한 탄소 및 질소 화합물의 이용은 Sorenson과 Hesseltine(1966)에 의해 조사되었습니다. 그들은 대두의 주요 탄수화물, 즉 스타키오즈, 라피노즈, 자당이 탄소의 유일한 공급원으로 활용되지 않고 포도당, 과당, 갈락토오스 및 말토오스와 같은 일반 당이 자일로스와 마찬가지로 우수한 성장을 지원한다는 것을 발견했습니다.

다양한 식물성 기름을 대체할 수 있으며, 당분은 성장이 우수한 탄소원입니다. 대두당은 R. oligosporus에 의해 사용되지 않고 템페 발효 및 템페 발효에 사용되는 Rhizopus 배양에 대해 강력한 리파제 활성이 보고되었기 때문에 지질 물질, 특히 지방산이 템페 발효를 위한 주요 에너지원일 가능성이 높습니다.

프롤린, 글리신, 아스파라긴산, 류신과 같은 암모늄염과 아미노산은 훌륭한 질소 공급원입니다. 다른 아미노산은 덜 적합하고 트립토판은 성장을 전혀 지원하지 않습니다. 그러나 균류는 성장을 위한 배지에 있는 특정 아미노산의 존재에 의존하지 않습니다. 질산나트륨은 유일한 질소 공급원으로 활용되지 않습니다.

R. oligosporus는 기질의 높은 단백질 함량 때문에 tempeh fer­mentation에 중요한 단백질 분해성이 높습니다. 두 개의 단백질 및 가수분해 효소 시스템이 하나는 3.0에서 최적 pH를 갖고 다른 하나는 5.5에서 최적 pH를 갖는 것으로 관찰되었습니다. 두 효소 시스템 모두 50°-55°C에서 최대 활성을 가지며 pH 3.0-6.0에서 상당히 안정적이지만 pH 2 미만 또는 7 초과에서는 빠르게 변성됩니다.

3.0에서 최적의 pH를 갖는 단백질 분해 효소는 5개의 활성 분획으로 분리되고 2개의 주요 분획으로부터 결정질 효소를 얻었다. 높은 프로테아제 활성 외에도 곰팡이는 강력한 리파제 활성을 갖지만 아밀라제 활성은 낮고 검출 가능한 펙티나제는 없습니다.

R. oligosporus로 템페를 만드는 순수한 배양 방법이 개발되었습니다. 많은 면에서 절차는 인도네시아에서 사용되는 절차와 유사합니다. Hesseltine et al. (1963B)는 페트리 접시에서 순수 배양 발효 및 발효를 수행했으며 테스트 절차는 매우 만족스럽고 수줍음이 많은 것으로 판명되었습니다.

발효를 위한 대두의 준비는 전통적인 방식과 동일합니다. 나중에 Martinelli와 Hesseltine(1964)은 템페 발효를 위해 전지방 대두 가루를 도입했습니다. 대두 자엽은 기계적으로 4~5조각으로 갈라진다. 콩가루는 물을 쉽게 흡수하기 때문에 불림 시간을 20시간 이상에서 30분으로 줄일 수 있습니다.

또한, 그릿을 생산할 때 선체를 기계적으로 제거하기 때문에 많은 노동력을 절약할 수 있습니다. 콩을 30분 동안 삶아 물기를 빼고 식힌 다음 28°C에서 5-7일 동안 감자-덱스트로-한천 경사면에서 자란 R. oligosporus의 포자를 접종합니다.

포자 현탁액은 몇 밀리리터의 멸균된 증류수를 경사면에 추가하여 준비합니다. 접종된 콩을 혼합하고, 페트리 접시에 단단히 포장하고, 약 20시간 동안 30°-31°C의 인큐베이터에 둡니다. R. oligosporus는 사실 다른 많은 곰팡이처럼 많은 통기를 필요로 하지 않습니다. 너무 많은 통기는 포자 형성을 유발할 수 있습니다.

따라서 페트리 접시를 단단히 포장하는 것이 중요합니다. 접시 가장자리에 약간의 포자가 발생할 수 있지만 제품에는 영향을 미치지 않습니다. 이 절차는 천공된 바닥과 덮개가 있는 얕은 나무 또는 금속 쟁반이나 천공된 비닐 봉지와 튜브에서 템페를 만드는 데에도 채택할 수 있습니다.

Steinkraus와 그의 동료(1960)는 0.85% 젖산을 담그는 물의 사용을 제안했습니다. 껍질을 벗기고 불린 콩도 산성 용액에서 요리됩니다. 이 처리는 콩의 pH를 4.0-5.0 범위로 가져옵니다. 이 pH 범위에서 오염 박테리아의 성장은 억제되지만 템페 곰팡이의 성장은 억제되지 않습니다. 그러나 우리는 우리의 과정에서 박테리아 성장을 경험하지 못했습니다.

R. oligosporus는 항균제를 생산하고 이 유기체도 빠른 성장의 독특한 특성을 가지고 있기 때문에 템페 발효가 완료되기 전에 박테리아가 땅을 얻을 기회가 거의 없습니다. 고(1970)는 이 문제를 더 조사하였다.

그는 의도적으로 다른 양의 대장균, B. mycoides, Pseudomonas pyocyanea, Proteus sp.를 접종했습니다. 또는 Hesseltine et al.에 의해 기술된 바와 같이 템페를 만드는 데 R. oligosporus와 함께 P. cocovenenaus. (1963B). 그의 결과는 fer­mentation이 접종된 박테리아의 존재에 의해 방해받지 않음을 나타냅니다. 고씨는 템페 발효 및 숙성 과정에서 불림 중 선호도나 불린 물에 산을 첨가하는 것은 그다지 중요하지 않을 수 있다고 언급했다.

템페를 준비하는 데 사용되는 껍질 제거, 담그기, 세척, 요리 및 발효 단계는 모두 대두 성분 및 슈유의 손실에 기여합니다. 여러 템페 준비에서 얻은 이러한 손실에 대한 평균 값은 표 12.5에 나와 있습니다. 고형물의 총 손실 범위는 콩의 종류와 종류, 사용된 공정에 따라 24.5-48.3%입니다.

고형 손실의 더 중요한 차이점은 dehull­ing 및 요리에 있습니다. Steinkraus et al. (1960)은 연마성 야채 껍질 벗기는 도구를 사용하여 수화 콩의 껍질을 느슨하게 하고 17.1%의 손실을 발견했으며 그 중 9.6%만이 껍질 제거에 직접 기인한 반면 Smith et al. (1964)는 손으로 선체를 제거하고 7.9%의 손실만 관찰했습니다.

한편, Smith et al. (1964)는 Steinkraus et al.보다 조리 중 훨씬 더 큰 손실을 보고했습니다. (1960). 부분적으로는 Steikraus et al. 콩 단백질의 등전점에 가깝고 침출 효과가 감소할 수 있는 pH 5의 산성 용액에 콩을 담그고 요리합니다.

기계적으로 껍질을 벗긴 대두 가루가 템페 제조에 선호되지만, 한 가지 단점은 담그는 동안 더 큰 고형물 손실이 있는 것으로 보입니다. 템페 가공에서 총 고형분 손실에 대한 대두의 품종 효과를 결정하기 위한 추가 연구가 필요합니다.

준비 및 조리 과정에서 수용성 물질의 손실을 방지하기 위해 콩을 충분히 불릴 수 있을 정도의 최소한의 물로 처리하거나 고압멸균 전에 일정량의 물을 뿌렸습니다. 그러나 Smith et al. (1964)는 이 절차를 따랐을 때 템페가 더 적은 곰팡이 발생과 많은 포자 형성을 보였다는 것을 발견했습니다.

이 제품은 또한 불쾌한 냄새와 좋지 않은 맛을 가졌다. Hesseltine et al.은 대두에 수용성 및 열안정성 곰팡이 억제제의 존재를 제안했습니다. (1963A). 나중에 Wang and Hesseltine(1965)은 대두의 수용성 및 열안정성 분획이 R. oligosporus에 의한 단백질 분해 효소의 형성을 억제한다는 것을 발견했습니다. 따라서 템페를 만들기 위해서는 콩을 물에 담그고 요리하는 것이 나중에 버려지는 것이 중요합니다.

템페 발효는 단순함과 신속함이 특징입니다. 그러나 적절한 접종원의 부족은 접종원이 순수하고 포자가 즉시 발아할 수 있는 능력이 있어야 하기 때문에 장애가 될 수 있습니다. 이러한 조건이 없으면 발효 과정이 거의 작동하지 않습니다.

전통적으로 이전 발효에서 나온 작은 템페 조각이 접종원으로 사용됩니다. 그런 다음 곰팡이는 주로 빠르게 성장하는 균사체를 통해 번식합니다. 이러한 관행은 바람직하지 않은 미생물에 의한 오염으로 이어질 수 있으며, 균사체는 불리한 온도 및 탈수에서 생존할 수 없기 때문에 균사체는 생존력을 장기간 보존하기에 적합하지 않습니다.

실험실에서 포자의 대량 생산을 위한 한천 배지를 준비하는 것은 비용이 많이 들고 시간이 많이 소요되며 선진국의 산업 공정이나 산업이 덜 발달된 국가에서 사용하기에 전혀 적합하지 않습니다. Steinkraus et al. (1965)는 건조된 템페를 생산하기 위한 파일럿 플랜트 공정을 위해 대두에 접종하기 위해 분말 동결건조 템페 몰드를 사용했습니다.

그들은 미리 조리된 콩 1kg에 동결건조된 곰팡이 배양액 3g을 사용했습니다. 접종물은 플라스크당 500g의 불린 콩이 포함된 3리터 Fernbach 플라스크에서 멸균되고 수화된 대두에서 순수 배양물로서 성장되었습니다. 오토클레이브 및 조리 후 플라스크에 접종하고 37°C에서 4일 동안 인큐베이션했습니다. 포자화된 배양물을 동결 건조하고 멸균된 실험실 버 밀에서 분쇄하였다.

Wang et al. (1975)는 최소한의 주의로 오랫동안 생존력을 유지할 수 있는 생존 가능한 포자 수가 많은 템페 접종물을 개발했습니다. R. oligosporus Saito NRRL 2710의 포자는 32°C에서 4-5일 동안 40% 수분 수준에서 쌀을 발효시켜 만들었습니다. 발효&수분물을 멸균수와 혼합하여 슬러리화한 후 동결건조하였다.

건조 기준으로, 제제 g당 생존 포자 수는 동결 건조 전 약 1 x 10 9 및 동결 건조 후 1 x 10 8 이었다. 동결건조 제제를 밀폐된 비닐백에 넣어 4°C에서 최대 6개월까지 보관했을 때, 포자 수는 전형적인 실험적 변화를 보였고 원래의 수와 비슷했습니다.

실온에서 생존력의 현저한 감소가 2개월 후(2 x 10 7 에서 1 x 10 6 로) 이후에 관찰되었으며 더 이상의 감소는 관찰되지 않았습니다. 제제의 박테리아 수가 최소화되어 발효 과정이나 보관 중 박테리아 오염이 문제가 되지 않는 것으로 나타났습니다.

밀기울은 또한 R. oligo­sporus의 포자 형성에 좋은 기질입니다. 콩을 사용하여 포자를 만들 때, 아마도 높은 단백질 함량으로 인해 발효 4-5일 후에 불쾌한 냄새가 종종 발생했습니다. R. oligosporus의 포자 생산에 대해 테스트한 기질 중에서 밀이 가장 불량했습니다. 밀 기질의 끈적거림은 포자 형성에 불리한 혐기성 조건을 생성했을 수 있습니다.

또한 물과 기질의 비율이 4:10 이하일 때 생육이 불량하고 포자형성이 잘 일어나지만 비율이 낮을수록 생장이 증가함을 발견하였다. 물과 기질의 비율을 8:10 이상으로 높였을 때 생육은 풍부했지만 포자수축은 현저히 적었다. 따라서 기질의 수분 함량은 고체 발효에서 가장 중요합니다.

접종물의 양이 너무 많으면 발효 시간이 너무 중요하기 때문에 만족스러운 템페를 만들기 위해 필요한 접종물의 양이 중요합니다. 반면에 너무 적은 양의 접종물은 오염 박테리아가 자랄 기회를 제공합니다. 조리된 대두 100g당 1 x 10 6 R. oligosporus 포자를 사용하는 것이 좋습니다.

인도네시아에서는 코프라(코코넛 케익)를 템페 발효에 사용하기도 하며 이 제품을 템페 봉크렉이라고 합니다. 우리는 밀, 귀리, 보리, 쌀 또는 곡물과 콩의 혼합물과 같은 곡물을 Rhizopus로 발효시켜 새로운 템페 유사 제품을 개발했습니다.

좋은 템페는 또한 두유와 두부의 두 가지 주요 식품인 대두의 물 추출에서 파생되는 두부 제조의 잔류물인 대두의 수불용성 분획으로 만들 수 있습니다.

그러나 이 수불용성 분획의 수분 함량은 이 분획이 발효에 적합하기 전에 질감이 부서지기 쉬운 것처럼 보이도록 80% 미만으로 감소되어야 합니다. 건조 기준으로 이 수불용성 분획에는 32%의 단백질이 포함되어 있으며 Hackler 등이 연구한 여러 대두 분획 중에서 품질이 가장 높습니다. (1963) 전지방 대두 가루, 대두 물 추출물, 산 침전 커드 및 유청 단백질.

템페는 부패하기 쉬우며 효소 작용에 의한 암모니아의 방출로 인해 제품이 역겨워지기 때문에 일반적으로 제조 당일 소비됩니다. 그러나 저장 수명은 다양한 방법으로 연장할 수 있습니다. 인도네시아에서는 템페를 조각으로 자른 다음 햇볕에 말립니다.

우리는 템페를 유지하는 가장 만족스러운 방법은 먼저 얇게 썬 템페를 데쳐서 곰팡이와 효소를 비활성화시킨 다음 얼리는 것임을 발견했습니다. Steinkraus et al. (1965)는 93°C에서 90-120분 동안 열풍 건조기로 템페를 탈수하는 파일럿 플랜트 공정을 개발했습니다. 그러나 뜨거운 공기 건조는 Steinkraus et al.에 의해 보고된 바와 같이 용해성 질소(표 12.6)를 포함한 용해성 고체의 감소를 유발합니다. (1960).

가용성의 감소가 영양가의 심각한 손실을 나타내는지 여부는 아직 결정되지 않았습니다. 동결건조는 가용성 성분에 덜 영향을 미치는 것으로 밝혀졌습니다. Iljas(1969)는 10주 동안 밀봉된 캔에 보관된 템페의 허용성과 안정성을 평가했습니다.

캔을 밀봉하여 -29°C에서 즉시 보관하거나 캔에 물을 채우고 증기 진공 밀봉하고 115°C에서 20분간 열처리하여 보관할 때 템페의 기호도에는 큰 변화가 없었습니다. 실온에서. 그러나 템페를 먼저 60℃에서 10시간 동안 공기 건조시킨 후 캔에 밀봉하여 실온에서 보관할 경우 보관이 진행됨에 따라 템페의 기호도가 떨어지는 경향이 있었다.템페의 저장 수명을 연장하는 또 다른 방법은 발효를 연기하는 것입니다. 미리 접종한 콩을 포장하여 냉동실에 보관하고 필요할 때 발효시킵니다.

대두에 대한 R. oligosporus의 효과는 여러 연구자에 의해 연구되었으며 Hesseltine and Wang(1978) 및 Iljas et al. (1973). Steinkraus et al. (1960)은 발효가 진행됨에 따라 발효콩의 온도가 인큐베이터 온도 이상으로 올라가지만, 곰팡이의 성장이 가라앉으면서 온도가 떨어진다는 것을 발견하였다.

pH는 아마도 단백질 분해로 인해 꾸준히 증가합니다. 69시간 배양 후 용해성 고형물이 13%에서 28%로 증가합니다. 용해성 질소도 0.5%에서 2.0%로 증가하는 반면, 총 질소는 상당히 일정하게 유지되고 환원 물질은 약간 감소합니다. 밀이 R. oligosporus에 의해 발효되었을 때도 유사한 변화가 관찰되었습니다.

Murata et al.은 발효 후 대두의 에테르 추출성 물질의 감소를 보고했습니다. (1967) 및 Wang et al. (1968), 곰팡이는 콩기름을 에너지원으로 사용함을 나타냅니다. Wagenknecht et al. (1961)은 배양 69시간 후에 전체 에테르 추출성 대두 지질의 1/3이 곰팡이에 의해 가수분해되며, 전체 지방산 중 리놀레산의 40%가 곰팡이에 의해 이용된다고 보고하였다.

발효 및 발효 동안 총 질소는 상당히 일정하게 유지되지만 템페의 유리 아미노산은 증가합니다. 반면에 대두의 아미노산 조성은 발효에 의해 크게 변하지 않는다. 아마도 템페에 존재하는 균사체 단백질의 양은 대두의 아미노산 조성을 크게 변화시킬 만큼 높지 않으며, 곰팡이는 Sorenson과 Hesseltine(1966)이 제안한 대로 성장을 위한 특정 아미노산에 의존하지 않습니다.

나이아신, 리보플라빈, 판토텐산, 비타민 B6 대두의 함량은 발효 후 증가하지만 티아민은 크게 변하지 않습니다. Wang and Hesseltine(1966)은 또한 R. oligosporus로 밀을 발효시킬 때 밀 템페의 니아신과 리보플라빈의 양이 발효되지 않은 밀의 양을 훨씬 초과하는 반면 티아민은 더 적은 것으로 보인다는 사실을 발견했습니다. 분명히 R. oligo­sporus는 나이아신, 리보플라빈, 판토텐산 및 비타민 B에 대한 합성 능력이 뛰어납니다.6그러나 티아민은 아닙니다.

R. oligosporus는 아밀라아제를 거의 생성하지 않습니다. 전분은 성숙한 대두에서 거의 발견되지 않기 때문에 이 종이 템페 발효 동안 아밀라아제를 생성하는 것은 특별히 중요하지 않습니다. 리파아제는 대두 지질을 가수분해하기 위해 곰팡이에 의해 생성됩니다. 프로테아제는 아마도 템페 발효에서 훨씬 더 중요한 효소일 것입니다.

단백질 분해 효소를 생산하는 Rhizopus의 능력은 같은 종의 다른 계통과 종 사이에 크게 다릅니다. 단백질 분해 효소 시스템은 3.0과 5.5에서 최적의 pH를 가지며, pH 3.0 유형은 침지 배양에서 우세하고 pH 5.5 유형은 템페 발효에서 우세합니다.

템페의 지질은 대조 대두의 지질보다 자가산화에 더 저항성이 있는 것으로 밝혀졌습니다. 템페의 과산화물가는 1.1인 반면, 대조군 대두의 과산화물가는 18.3~201.9였다. Ikehataet al. (1968)은 5개월 동안 37°C에서 보관한 동결건조 템페의 과산화물가가 6에서 12로 증가했으며, 발효되지 않은 대두는 6에서 426으로 증가했습니다.

템페의 산화제 활성은 Packett et al.에 의해 추가로 입증되었습니다. (1971)은 50% 템페를 함유한 옥수수 기름이 25% 템페, 0.01% α-토코페롤 또는 0.03% α-토코페롤을 함유한 기름보다 더 높은 항산화 잠재력을 나타냈다고 보고했습니다. 1964년 Gyorgy et al. “Factor 2,”로 지정된 템페에서 새로운 이소플라본을 분리하여 6,7,4′-트리하이드록시이소플라본으로 확인했습니다. 6,7,4′-Trihydroxyisoflavone은 나중에 화학적으로 합성되었으며 pH 7.4의 수용액에서 비타민 A와 리놀레산에 대한 강력한 항산화제로 판명되었습니다. 그러나 이소플라본을 콩가루나 콩기름과 섞어도 자기산화를 막지는 못했다.

이 저자들은 오일에 이소플라본의 불용성 및 대두 가루로의 분산 및 분산의 어려움이 자가산화를 방지하지 못하는 이유 중 일부일 수 있다고 추측했습니다. 따라서 템페의 항산화 및 샤이던트 활성을 담당하는 화합물은 아직 결정되지 않았습니다.

템페를 생산할 때 콩은 부분적으로만 익히고 불린 콩만큼 단단하게 유지됩니다. 발효 후 콩은 부드럽고 질감이 완전히 익힌 콩과 비슷합니다. 초기의 세포학적 연구에서는 균사체가 콩의 밑에 있는 조직으로 약간만 침투하는 것으로 나타났으며, 이는 소화가 주로 효소에 의한 것임을 시사합니다.

그러나 최근 연구에서는 균사가 742μm 깊이까지 침투하는 것으로 나타났으며, 이는 대두 자엽 평균 너비의 약 25%였습니다. 이 저자들은 균사체 침투의 극도의 깊이가 템페 발효 동안 발생하는 급격한 물리적 및 화학적 변화를 부분적으로 설명한다고 추측했습니다.

균사는 효소 소화 전에 또는 이와 함께 콩 세포를 기계적으로 밀어낼 수 있으므로 콩이 부드러워집니다. 마찬가지로, 효소의 확산이 일어나야 하는 거리가 크게 줄어들기 때문에 효소 활성의 침투도 향상될 수 있다.

인도네시아인들은 템페를 영양가 있고 소화가 잘 되는 음식으로 생각합니다. Van Veen과 Schaefer(1950)는 2차 세계 대전의 포로 수용소에서 이질 환자에게 템페의 유익한 효과를 관찰했으며 템페가 대두보다 훨씬 소화하기 쉽다고 제안했습니다.

그러나 대두 단백질, 지방 및 N-free 추출물의 절반 이상이 72시간 발효에 의해 가용화될 수 있음에도 동물 사료 실험은 이러한 결론을 입증하지 못했습니다. 템페의 단백질 효율 비율(PER)도 발효되지 않은 대두와 크게 다르지 않습니다.

그러나 조리 절차는 템페의 영양가에 영향을 미치지만 템페의 PER 값은 기름에 3분 이상 튀긴 후에는 유의하게 감소한 반면 2시간까지 찜에는 효과가 없었다. 템페 단백질의 품질은 곡물과 대두의 혼합물로 템페를 만들어 개선할 수 있습니다. 예를 들어, 밀-대두(1:1) 템페의 PER 값은 카제인의 PER 값과 비슷했습니다.

Gyorgy(1961)는 저단백 사료를 급여한 동물에 대해 발효되지 않은 대두보다 템페의 우수한 영양가를 언급했습니다. 그의 결과는 단백질 공급원에 추가된 항생제를 먹인 동물에서 얻은 결과와 유사합니다. 우리는 R. oligosporus가 침지 배양뿐만 아니라 템페 발효 동안에도 실제로 항균제를 생산한다는 것을 발견했습니다.

이 화합물은 특히 Strep­tococcus cremoris, Bacillus subtilis, Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens 및 C. sporogenes와 같은 미세호기성 및 혐기성 박테리아를 포함한 일부 그람 양성 박테리아에 대해 활성입니다. 이 화합물은 탄수화물 함량이 높은 폴리펩타이드를 함유하고 있습니다.

그 활성은 펩신이나 R. oligosporus protease에 의해 영향을 받지 않고, 트립신과 펩티다아제에 의해 약간 감소하지만 pronase에 의해 빠르게 비활성화됩니다. 항생제가 감염을 최소화하는 것 외에도 애니 및 샤이멀, 특히 여러 비타민 및 샤이민, 단백질 또는 기타 성장 인자가 결핍된 식단에서 성장 자극 효과를 유발한다는 것은 잘 알려져 있습니다.

동양인들은 압도적인 감염원에 끊임없이 노출되어 있고 그들의 식단은 종종 부적절합니다. 따라서 R. oligosporus가 생산하는 항균제의 발견은 인도네시아인의 식단에서 템페의 가치, 그리고 아마도 모든 동양인의 식단에서 발효 식품의 가치에 대한 더 명확한 이해를 제공할 수 있습니다.

고창인자로 알려진 스타키오스와 라피노오스는 탄소의 유일한 공급원으로 활용되지는 않지만, 대두의 스타치&샤이오스는 발효가 진행됨에 따라 감소하는 것으로 나타났습니다. Calloway et al(1971)은 템페가 건강한 젊은 남성의 기준치 이상으로 가스 생성을 증가시키지 않고 가스 생성 시간을 상당히 지연시켜 장내 세균의 일시적인 억제 및 수축을 시사한다는 것을 발견했습니다. 이 지연은 Rhizopus 곰팡이가 생산하는 항생제의 존재로 인해 발생할 수 있습니다.

템페는 인도네시아에서 메인 요리로 사용됩니다. 템페에 대한 총 생산 데이터는 사용할 수 없지만 중부 자바 주에서만 1972년에 35,100MT의 템페가 만들어졌습니다.

맛과 질감에 대한 높은 수용도, 콩 맛의 부족, 영양상의 이점, 간단하고 저렴한 가공 기술로 인해 템페는 저비용 및 고단백 식품을 찾는 모든 국가에 적합한 후보로 보입니다. 최근 식물성 식품에 대한 채식주의자들의 관심이 높아짐에 따라 미국에서 템페 소비가 급증하고 있습니다. 가정 프로젝트로 템페를 만드는 것 외에도 여러 상업적 템페 생산자가 설립되었습니다. Tem­peh는 곧 미국 시장에서 단골 품목이 될 것입니다.


효모 배양 연구실

효모 연구실 효모는 곰팡이라고 불리는 유기체 그룹에 속하는 미세한 단세포 유기체입니다. 그들은 Saccharomyces cerevisiae의 학명을 가진 단세포 유기체입니다. 효모는 많은 목적을 가질 수 있지만 효모의 주요 목적은 발효 과정을 돕는 것입니다. 효모는 곰팡이로 알려진 살아있는 유기체이며 설탕에서 에너지원을 얻습니다. 효모는 또한 다량의 호르몬과 효소로 인해 상처를 치유하고 염증을 줄이는 특정 의학적 의도를 만드는 데 사용될 수 있습니다. 효모 번식과 관련하여 종의 유형에 따라 다릅니다. 유사 분열에 의해 무성 또는 신진에 의해 유성 일 수 있기 때문입니다. 소비는 CO2에서 에너지를 생성하기 위해 광합성이 필요한 1차 소비자의 사용량과 사용량에 대해 이야기했습니다. 사망은 인구와 관련하여 인구의 사망자 수를 나타냅니다.
가설
이 실험실의 주요 목표는 효모를 참조하는 배양물을 테스트하는 것입니다. 가설은 효모가 위치한 모든 환경에서 자라지만 설탕이 있는 환경에서 번성할 것이라는 것입니다. 왜냐하면 효모가 자연적으로 설탕을 에너지원으로 사용하여 효모를 더 많이 생성하게 하기 때문입니다. 효모는 모든 환경에서 동일할 수 있지만 가장 가능성 있는 상황은 효모가 설탕에서 빠르게 성장하는 것입니다. 이 가설은 테스트를 거쳐야 하며 이를 위해서는 다양한 환경에서 수집된 효모의 양이 분석되어야 하고 데이터가 제공되어야 합니다. 데이터는 4가지 다른 환경에서 테스트되었으며 0,24, 48, 72 및 96시간 간격으로 관찰되었습니다. 사용된 환경 조건은 통제된 환경, 제한된 번식 환경, 추가 먹이 환경 및 도입된 포식 환경이었다.
재료
다음 자료는 실험을 완료하는 데 필요합니다.
4 - 효모 패킷
1 - 암모니아 혼합물
1 - 설탕 혼합물
1 - 증류수
1 - 균형
1 - 미생물 혼합물
1 - 스포이드
1 - 현미경
4 - 10mL 눈금 실린더
4 - 18mm x 150mm 배양 괴경
1 - 시험관 랙

행동 양식
실험을 수행하기 위한 단계는 다음과 같습니다.
먼저 테스트 튜브는 효모에 혼합될 모든 다른 재료의 라벨이 필요합니다. 네 개의 레이블은 Control, Ammonia, Sugar 및 Microbe입니다. 실험실 데이터 시트에는 모든 데이터를 기록할 수 있도록 각 용액의 시간과 농도와 함께 각 튜브의 이름도 있습니다.
두 번째로 튜브는 최대 10ml의 용액으로 채워집니다.
세 번째로 효모 현탁액을 별도의 용기에 넣고 이 용액을 각 튜브에 한 방울씩 떨어뜨립니다.
넷째, 관에서 각 용액을 한 방울씩 꺼내어 현미경으로 관찰한다. 결과는 데이터 시트에 기록되고 이 단계는 24, 48, 72 및 96시간의 각 시간 간격으로 반복됩니다.
다섯째, 실험실을 정리하고 모든 것을 제자리에 놓고 모든 데이터를 기록하고 결과를 살펴봐야 합니다.

결과 실험이 수행되고 모든 데이터가 기록되면 데이터를 분석해야 했습니다. 예상했던 가설이 맞는 것으로 밝혀졌다. 용액 튜브의 효모가 활성화되었습니다 설탕이 들어간 효모 튜브가 가장 활성이 된 튜브였습니다. 모든 튜브에서 효모는 다른 튜브의 두 배 크기로 물리적으로 팽창된 설탕과 함께 튜브를 물리적으로 확장했습니다. 이로 인해 용액이 시험관의 가장자리까지 올라갔습니다. 효모와 설탕 용액은 200개 이상으로 증가했고 다른 용액은 100개 수준을 넘었을 뿐입니다. 아래 데이터 그래프는 솔루션이 지속적으로 증가했음을 보여주고 번식률로 인한 인구 피크와 감소를 보여줍니다. 효모 용액은 결국 죽기 시작합니다.

간격 | 제어 | 제한된 재생산 | 추가 식품 | 도입된 포식 | 1(0시간) | 5 | 6 | 6 | 6 | 2(24시간) | 13 | 11 | 12 | 12 | 3(48시간) | 94 | 64 | 167 | 79 | 4(72시간) | 77 | 43 | 202 | 37 | 5(96시간) | 25 | 7 | 96 | 11 |

토론 실험실에는 여러 단계가 있었고 각 단계에서 다른 일이 발생했습니다. 실험 초기에는 모든 테스트 솔루션에 대해 인구 증가 주기가 느리고 안정적이었습니다. 24시간 기간이 끝나고 다음 24시간 기간이 시작될 때 성장률이 상당히 증가했습니다. 셋째 날은 성장률이 여전히 증가하고 있음을 보여주었지만, 다음 24시간이 되었을 때 모든 것이 증가하는 대신 로 바뀌었습니다. 성장률이 끝나기 시작하고 효모가 죽기 시작하는 것을 알아차리기 시작했습니다. 관찰된 효모 용액은 더 큰 규모로 표시되는 단순한 유기체와 상관관계가 있습니다. 단순한 유기체와 담수 폐기물과 같은 복잡한 유기체 사이의 상관관계는 우리가 그것을 사용하는 경향이 더 많고 폐기물 가능성이 적으면 나중에 충분할 것이고 결국 고갈될 것입니다. 생지화학적 주기는 이 교환의 측면에서 효모가 어떻게 중요할 수 있는지 모니터링합니다. 두 가지 다른 방식이 효모 발효와 호기성 호흡에 기여할 수 있습니다. 2의 차이점은 발효가 공식에 산소가 부족하여 2개의 ATP만 생성된다는 것입니다. 포도당 분자가 6개의 탄소 원자를 갖고 3개의 탄소 원자를 갖는 2개의 분자로 분할될 때 발효 과정이 완료됩니다. 이러한 일이 발생하면 해당과정이라고 하며 이 과정에서 총 10개의 화학물질이 반응하여 2개의 ATP 분자 형태로 방출 에너지가 생성됩니다. 호기성 호흡 과정은 산소가 존재하고 동일한 10단계의 해당과정이 일어날 때 발생합니다. 추가된 산소는 해당과정이 포도당 분자가 완전히 분해될 때 발생하는 추가 단계가 되도록 합니다. 이 과정에서 방출되는 에너지는 각 포도당 분자에 대해 약 36개 ATP 분자인 발효 과정보다 더 크고 더 많습니다. 효모의 발효 과정을 위한 호기성 호흡은 당으로부터 에너지를 생산할 수 있습니다. 산소의 호기성 호흡이 있어야 합니다. 화학식은 입니다. 산소를 사용할 수 있을 때 효모는 발효 과정을 사용할 수 있습니다. 화학 공식이 로 변경될 산소가 없기 때문에 이 과정은 여전히 ​​설탕을 사용합니다. 둘 다 ATo 및 를 생성하기 때문에 각 공식은 유사합니다.
결론
이 연구실에 주어진 원래 가설은 정확했으며 효모와 결합된 설탕 용액이 사용된 4가지 용액 모두에서 가장 활성이 높다는 것이었습니다. 이 실습을 진행하는 동안 문제가 없었고 오류가 발생하지 않았습니다. 이 실습에서 가장 중요한 부분은 모든 것이 정확하고 정확하게 기록되었는지 확인하는 것이었습니다. 효모와 산소 방출을 포함하는 미래의 실험실 실험은 생지화학적 순환의 측정을 제공합니다. 실험에는 2세트의 용액이 사용되었으며 하나는 발효용 산소와 다른 하나는 호기성 호흡용으로 사용됩니다.

참고문헌
Smith, T.M., & Smith, R.L.(2009). 생태학의 요소(7판). 캘리포니아주 샌프란시스코: Benjamin Cummings/Pearson.

UOP(2014). Yeast Lab 스프레드시트 BIO/315 버전 2. University of Phoenix에서 가져옴
UOP(2014). Yeast Lab 워크시트 BIO/315 버전 2. University of Phoenix에서 가져옴
UOP(2014). 연구 보고서 개요 BIO/315 버전 2. University of Phoenix에서 가져옴

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효모 배양 연구실

. 효모 배양 연구실 소개 효모는 균류 왕국의 일부인 단세포, 미세한 유기체입니다. 효모는 단일 그룹을 구성하지 않습니다(Smith & Smith, 2012). 효모는 유기 물질을 에너지 생성 수단으로 사용하여 화학 유기 영양 생물로 만듭니다(Smith & Smith, 2012). 탄소는 주로 과당 및 포도당과 같은 육탄당에서 조달됩니다. 효모는 호기성 세포 호흡 또는 혐기성 종을 위해 산소가 필요하지만 에너지를 생성하는 호기성 방법도 있습니다(Smith & Smith, 2012). 혐기성으로만 자라는 것으로 알려진 효모 종은 없습니다. 효모는 약산성 환경에서 번성합니다(Smith & Smith, 2012). 효모의 번식 주기는 종에 따라 무성 또는 유성일 수 있습니다. 효모에서 가장 널리 볼 수 있는 성장 방법은 출아라고 하는 무성 생식입니다(Smith & Smith, 2012). 효모와 관련하여 번식은 종에 따라 다릅니다. 이 종은 유사분열에 의해 무성일 수 있고 싹에 의해 유성일 수 있습니다(Smith & Smith, 2012). 소비는 나무와 같은 1차 소비자와 같은 소비자가 광합성을 사용하여 이산화탄소에서 에너지를 만드는 방법과 같은 무언가의 사용 및 사용 비율을 나타냅니다. 인구와 관련된 사망은 해당 인구의 사망 비율을 나타냅니다(Smith & Smith, 2012). 가설 효모 배양 실험실의 주요 목표는 효모 배양 샘플과 관련된 이론을 테스트하는 것입니다.

랩 페이퍼

. 효모 배양 연구실 I. 서론 1. 효모는 진핵생물의 단세포 진균으로 액체나 습한 서식지에 서식한다. 그들은 종속 영양 생물이며 영양을 위해 복잡한 유기 물질에 의존합니다. 효모는 호기성 세포 호흡을 위해 산소가 필요하지만 일부는 에너지 생산을 위한 대체 호기성 방법을 사용하는 혐기성이기도 합니다. 그들은 성장하는 데 빛이 필요하지 않으며 온도 범위가 다양하므로 다양한 환경에서 생존할 수 있습니다. 매우 일반적으로 과일 껍질에서 발생하는 것부터 동물의 장에 기생하는 기생충에 이르기까지 어디에서나 발견할 수 있습니다. 효모의 가장 일반적인 번식 방법은 출아를 통한 무성 생식입니다. 이 과정에서 모세포의 핵이 분열하여 딸핵을 형성합니다. 딸세포는 분리될 만큼 충분히 커질 때까지 모세포에서 자랍니다. 세포질 분열을 통해 이 '싹'은 새로운 세포를 형성합니다. 덜 일반적은 포자가 형성되는 유성 생식 방법입니다. 이 실험실에서는 서로 다른 조건에서 4개의 효모 샘플을 배양할 것입니다. 목표는 제한된 번식, 추가 자원(영양) 및 포식이 효모 개체군에 미치는 영향을 연구하는 것입니다.효모는 자연에서 영양분을 재활용하는 역할을 할 뿐만 아니라 발효를 통해 탄수화물을 이산화탄소와 알코올로 전환시킬 수 있기 때문에 식품 산업에서도 매우 중요한 역할을 합니다. 그들은 또한 세포 생물학 연구에 사용되며 에탄올을 생산합니다.

화학 반응 속도

. 온도의 영향을 받습니다. 이 실험은 발효 속도를 측정하여 효모의 이산화탄소 생성 속도에 대한 5가지 다른 온도의 영향을 테스트하기 위해 수행됩니다. "발효 속도는 ml/min으로 측정됩니다." 이 실험을 수행하는 목적은 각 온도에서 생성되는 이산화탄소의 양을 측정하여 결정할 수 있는 효모 세포의 발효 속도를 이해하는 것입니다. 실험실에서 생성되는 이산화탄소를 직접 측정할 수 있는 방법이 없기 때문에 간접적인 방법을 사용합니다. 이 실험에서 발효 속도는 각 수조에서 보낸 시간에 따라 측정된 이산화탄소 생성 속도인 ml/min으로 측정됩니다. 물은 실험이 끝날 때 생성된 이산화탄소를 대체할 것입니다. 물의 양은 밀리리터 단위로 측정됩니다(눈금이 있는 실린더에 의해). 이산화탄소는 이 실험에서 간접적으로 이외의 수단으로 측정할 수 없는 기체이기 때문에 간접적인 발효율 방법이 될 것입니다. 이산화탄소 생성량은 25°C, 35°C, 45°C, 55°C, 65°C의 서로 다른 온도에서 물의 부피를 측정하여 측정했습니다. 다른 온도에 대해 모든 측정이 수행된 시간도 기록되었습니다. 재료 및 방법 이 실험에 사용된 재료는 다음과 같습니다. 효모 배양물(당밀 형태의 효모 및 포도당 함유) 5개의 발효 튜브, 물, 레드 왁스 연필, 눈금 실린더 수조(라벨링됨.

Bio156 연구실 5

. 56 다음 용어를 정의하십시오: 세포 호흡(호기성 호흡) (2점) 세포 호흡은 세포가 ATP의 형태로 에너지를 얻는 과정입니다. 세포 호흡에는 호기성과 혐기성의 두 가지 유형이 있습니다. 호기성 호흡은 더 효율적이며 산소가 있는 곳에서 사용할 수 있습니다. 호기성 호흡 또는 산소를 사용하는 세포 호흡은 TCA 회로에서 해당과정의 최종 생성물을 사용하여 무산소 경로에서 얻을 수 있는 것보다 ATP 형태로 더 많은 에너지 통화를 생성합니다. 발효(혐기성 호흡) (2점) 발효는 당을 산, 가스 또는 알코올로 전환시키는 대사 과정입니다. 그것은 효모와 박테리아에서 발생하지만 산소가 부족한 인간의 근육 세포에서도 발생합니다. 발효는 김치와 같은 맥주와 음식을 만들기 위해 인간에 의해 사용됩니다. 발효는 기질 수준 인산화 과정에 의해 ATP를 생성하는 혐기성 소화의 한 형태입니다. 세포 호흡의 세 단계 동안 일어나는 일을 요약하고 각 과정이 세포에서 일어나는 위치를 표시하십시오. (6점) 해당작용 : 세포질에서 일어나는 과정이다. 그것은 포도당의 각 분자를 피루브산의 두 분자로 변환합니다. 산소의 유무에 관계없이 진행되는 혐기성 과정을 말합니다. 피루브산은 호흡의 다음 단계를 위해 피루브산을 준비하기 시작하는 전이 반응이 일어나는 미토콘드리아의 내부 구획으로 확산됩니다. 크렙스 사이클-이것.

항효모 화합물의 특성화

. Red de Revistas Científicas de América Latina, el Caribe, España y Portugal Sistema de Información Científica Duangporn Kantachote, Pakorn Prachyakij, Wilawan Charernjiratrakul, Nidsawee Duangjitcharoens Chaibe, Teraki의 Antibiotic 속성 발효 식물 음료에 사용할 수 있는 스타터 Lactobacillus plantarum DW3 Electronic Journal of Biotechnology, vol. 13, 숫자 5, 2010, pp. 1-15, Pontificia Universidad Católica de Valparaíso 칠레 제공: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=173318799002 Electronic Journal of Biotechnology, ISSN(전자 버전): 0717-3458 [email protected] Pontificia Universidad Católica de Valparaíso 칠레 인용 방법 전체 호 이 기사에 대한 추가 정보 Journal's 홈페이지 www.redalyc.org Open Acces Initiative Electronic Journal of Biotechnology ISSN에 따라 개발된 비영리 학술 프로젝트 ISSN: 0717-3458 http ://www.ejbiotechnology.info DOI: 10.2225/vol13-issue5-fulltext-1 발효 식물 음료에 사용할 수 있는 스타터 Lactobacillus plantarum DW3의 항효모 화합물 및 프로바이오틱 특성 Duangporn Kantachote1 1 · Pakorn Prachyakijernji · Wilawantrakul Char Ongsakul · Yodsawee Duangjicharoen2 · Chaiyavat Chaiyasut2 Teruhiko Nitoda3 · Hiroshi Kanzaki3 1 송클라 대학교 프린스, 이학부 미생물학과.

마이크로 에세이

. MicroBiology- MLT1 LabPaq / 발행: Hands-On Labs, Inc. [email protected] / www.LabPaq.com / 수신자 부담 866.206.0773 미생물학의 독립적 연구를 위한 소규모 실험의 실험실 매뉴얼 50-0222- MB-01 LabPaq®은 Hands-On Labs, Inc.(HOL)의 등록 상표입니다. 이 설명서에 언급된 LabPaq은 LabPaq의 고유한 설계, 조립 및 학습 경험과 관련된 지적 재산권에 대한 모든 저작권을 보유하고 있는 Hands-On Labs, Inc.에서 제작했습니다. LabPaq에 포함된 실험실 설명서는 LabPaq의 원래 구매자만 사용할 수 있으며 LabPaq 없이 또는 HOL의 특정 서면 동의 없이 다른 사람이 재사용할 수 없습니다. LabPaq 설명서 자료의 어떤 부분도 HOL의 명시적인 서면 동의 없이 복제, 전송 또는 다른 사람에게 배포할 수 없으며 공개 또는 비공개 공유 시스템이나 서버에 다운로드할 수 없습니다. HOL의 명시적인 서면 동의 없이 LabPaq 자료를 변경할 수 없습니다. HOL은 이러한 자료에 수년간의 연구 및 개발을 투자했으며 이와 관련된 모든 권리를 보유하고 오용에 대해 상당한 처벌을 부과할 권리를 보유합니다. 발행처: Hands-On Labs, Inc. 3880 S. Windermere St. Englewood, CO 80110 전화: Denver 지역: 303-679-6252 수신자 부담, 장거리 전화: 866-206-0773 www.LabPaq.com 우편.

DNA 연구실

. (요구 영양체 대 원시 영양체, 유전자 대 대립 유전자, 이배체 대 반수체, 보완, 분리 및 독립 분류, 감수 분열 대 유사 분열, 유전자형 대 표현형) 과학적 가설 개발 및 테스트 현미경, 마이크로 피펫 터, 마이크로 원심 분리기 및 혈구계로 작업하는 방법 배우기 신진대사의 유전학에 대해 알아보십시오. 이 프로젝트의 채점 방법: 1. 질문 세트 1, 2 및 3에 대한 점수가 단일 등급으로 결합됩니다. 해당 성적은 해당 과정의 랩 평균에 포함됩니다. 랩 평균은 이 과정의 강의 계획서에 설명된 대로 최종 학기 평균에 포함됩니다. (문제 제출 마감일은 실습 진행 상황에 따라 수업 시간에 결정됩니다.) 2. 문제 세트 4, 5, 6의 점수는 단일 등급으로 통합됩니다. 해당 성적은 해당 과정의 랩 평균에 포함됩니다. (질문 제출 마감일은 실습 진행 상황에 따라 수업에서 결정됩니다.) 3. Molecular & Cellular Biology 저널에 제출하기에 적합한 형식과 형식으로 정식 연구 보고서를 작성합니다. 보고서는 마지막 학기에 포함됩니다.

다목적 실험실 발효기에서 에탄올 생산을 위한 혐기성 효모 발효

. 다목적 실험실 발효기에서 에탄올 생산을 위한 혐기성 효모 발효 Abstract 연구용이든 생산용이든 New Brunswick Scientific의 다목적 BioFlo® 310 발효기는 박테리아, 식물, 조류, 곰팡이와 효모. 고급 컨트롤러는 최대 4개의 용기를 동시에 조절할 수 있으며 총 120개의 프로세스 루프가 있습니다. 여기에서 우리는 호기성 성장 단계에서 혐기성 정상 상태 배양으로 전환하여 효모에서 에탄올 생산을 유도하는 기술인 다용도성의 한 측면을 보여줍니다. 서론 Saccharomyces cerevisiae는 조작 및 배양이 용이하고 인간 세포와 구조가 비교적 유사하여 연구에 자주 사용되는 모델 진핵 생물입니다. 이 효모는 또한 맥주, 와인, 빵의 효소와 단백질을 제조하는 산업 응용 분야에서 널리 사용되며 포도당을 에탄올로 대사하기 때문에 많은 바이오 연료 제품을 생산하는 데에도 사용됩니다. 우리는 7.5리터 BioFlo 310 발효기에서 S. cerevisiae(American Type Culture Collection 균주 20602)로부터 에탄올을 생산하여 이 고급 발효 시스템의 유연성을 보여주었습니다. 첫 번째 단계에서 우리는 충분한 세포 밀도를 생성하기 위해 용존 산소 캐스케이드 제어 전략을 사용하여 호기성 환경에서 효모를 성장시켰습니다. 그런 다음 질소 가스를 펌핑하여 에탄올 생산을 유도하기 위한 혐기성 환경을 조성하고 환원제를 사용했습니다.

. 생명 연구실 매뉴얼 Stephen W. Ziser 생물학과 피나클 캠퍼스 BIOL 1409 일반 생물학: 생명 연구 활동의 다양성, 숙제 및 연구 과제 2013.8 Biol 1409: 생명의 다양성 – 연구 매뉴얼, Ziser, 2013.8 1 Biol 1409: 다양성 of Life Ziser-Lab 매뉴얼 목차 1. 학기 연구실 활동 개요 연구실 활동 . . . . . . . . . 2. 실험실 및 안전 정보 소개 . . . . . 삼 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5 15 30 39 46 54 68 81 104 147 3. 실험실 실습 현미경 . . . . . . 분류 및 분류 . 세포 – 생명의 기본 단위 . 무성 및 유성 생식 발달 및 수명 주기 . . 텍사스의 생태계 . . . . 박테리아 왕국 . . . 프로티스트 . . . . . . 곰팡이 . . . . . . . 식물왕국 . . . . 동물의 왕국 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12 13 17 22 26 29 . 32 . 42 . 50 . 59 . 89 4. 실험실 보고서(제출 예정 - 마감일.

미생물학

. 이름 및 과정 섹션: LeKesha Hinds 제목: Bacterial Morphology- Lab #2 목적: 습식 마운트 슬라이드를 준비하고 직접 및 간접 염색 기술을 학습하여 형태를 관찰할 수 있습니다. 절차: 먼저 현미경을 설정합니다. 박테리아 형태의 준비된 슬라이드를 봅니다. 나머지 연습에 대한 비교 도구로 각 형태학적 유형을 사용합니다. 부록의 소독 용액 준비 섹션에 있는 절차를 사용하여 10% 표백 용액으로 작업 영역을 소독하십시오. 마커 연필을 사용하여 세 개의 슬라이드 각각에 동전 크기의 원을 만드십시오. 깨끗한 피펫을 사용하여 첫 번째 슬라이드의 원에 따뜻한 물 한 방울을 추가합니다. 면봉으로 입 안과 잇몸을 세게 문지릅니다. 첫 번째 슬라이드의 원 안에 면봉을 바르고 가능한 한 많은 재료를 물방울에 옮깁니다. 커버 슬립으로 드롭을 덮으십시오. 피펫을 사용하여 두 번째 슬라이드의 원에 물 한 방울을 추가합니다. 이쑤시개를 사용하여 치아에서 플라크 샘플을 긁어냅니다. 이쑤시개에서 물 한 방울로 플라크를 옮기고 덩어리를 녹일 수 있도록 잘 섞습니다. 커버 슬립으로 드롭을 덮으십시오. 피펫을 사용하여 세 번째 슬라이드의 원에 S. cerevisiae 혼합물 한 방울을 추가합니다. 커버 슬립으로 드롭을 덮으십시오. 나중에 사용할 수 있도록 이스트 혼합물 컵과 피펫을 따로 보관합니다. 둘째, 첫 번째 슬라이드와 동일하게 수행합니다. 슬라이드가 완전히 건조되면 화염 소스로 각 슬라이드를 열 고정합니다. 잡고있다.

이가 레벨

. 미생물학 개요 예비 미생물학 데이터 해석 그람 양성 구균 호기성 클러스터 내 ● 응고효소(+): 황색포도상구균 ● 응고효소(-): 황색포도상구균 및 기타 응고효소음성 포도구균 쌍/사슬 ● 옵토킨 민감성: 연쇄상구균 용해성: 폐렴균 그룹 연쇄상 구균, 장구균 ● 베타 용혈성: ○ 그룹 A 연쇄상 구균(Streptococcus pyogenes) ○ 그룹 B 연쇄상 구균(Streptococcus agalactiae) ○ 그룹 C, D, G 연쇄상 구균 혐기성: Peptostreptococcus spp. 및 기타 다수 그람 양성 간균 호기성 ● 대형: Bacillus spp ● Cocco-bacillus: Listeria monocytogenes, Lactobacillus spp ● 소형, 다형성: Corynebacterium spp ● 분지 필라멘트: Nocardia spp, Streptomyces spp 그람 음성 구균 호기성: Neisseria men N. gonorrhoeae, Moraxella catarrhalis ● Cocco-bacillus: Haemophilus influenzae, Acinetobacter Anaerobic: Veillonella spp. 그람 음성 간균 호기성 유당 발효(유당 양성): ● Enterobacter spp, Escherichia coli, Klebsiella spp ● Citrobacter spp*, Serratia spp* 비 유당 발효(유당 음성): ● 산화효소(-): Acinetoholderia spp, Burk E. coli, Proteus spp, Salmonella spp, Shigella spp, Serratia spp*, Stenotrophomonas maltophilia ● 산화효소(+): P. aeruginosa, Aeromonas spp. 혐기성 ● 대형: Clostridium spp 혐기성: Bacteroides spp, Fusobacterium spp, Prevotella spp. ● 소형, 다형성: P. 아크네스, 악티노마이세스 종 *Serratia 및 Citrobacter spp.

돼지 독감

. 시험 2 에세이 Terrika Moore "질문 10 답변" Bergey's Manual은 원핵생물과 박테리아를 분류하는 데 사용되는 시스템입니다. 가이드의 초판은 그람 염색과 대사 반응의 특정 특성을 기반으로 하는 표현형이라는 방법이었습니다. 그러나 새로운 두 번째 판에서는 분류와 식별이 더욱 심화되었습니다. 유전 정보를 기반으로 박테리아의 관계 및 계통 발생 역사를 지정합니다. Bergey의 매뉴얼 2판은 다섯 권으로 나뉩니다: Vol. 1은 Domain Archaea와 Domain Bacteria를 자체 그룹으로 분리합니다. 권. 2는 Phylum Proteobacteria를 나타내며 5개의 분류 그룹으로 나눕니다. 이 박테리아는 모두 그람 음성 세포벽을 가지고 있습니다. 권. 3은 Phylum Firmicutes를 나타내며, 이들은 3개의 클래스만 있는 낮은 G + C 그램 양성 박테리아입니다. 이 박테리아 그룹에는 포도상 구균과 연쇄상 구균이 포함됩니다. 권. 4는 Phylum Actinobacteria의 단일 클래스를 포함하며, 이 박테리아는 높은 G + C 그램 양성 박테리아입니다. 권. 5는 모두 그람 음성이지만 관련이 있을 수도 있고 아닐 수도 있는 9개의 문을 포함합니다. "질문 7 답변" Zygomycota는 이 곰팡이가 죽은 물질이나 썩어가는 물질로부터 영양분을 받는 부생 곰팡이입니다. 이 곰팡이는 빵의 검은 곰팡이입니다. 무성 생식은 포자낭포자이고 유성포자는 큰 접합포자이며 두꺼운 벽으로 둘러싸여 있습니다. Zygomycota는 면역 억제 또는 심각한 감염을 일으킬 수 있습니다.

작업 2

. 작업 흐름 2 미생물학은 유기체가 성장하는 데 필요한 환경 조건에 따라 분류할 수 있습니다. 미생물의 두 가지 큰 범주는 살기 위해 산소를 필요로 하는 미생물(절대 호기성)과 산소와 함께 성장할 수 있지만 산소 없이도 성장할 수 있는 미생물(통성 호기성)입니다. 절대 호기성 미생물은 "이 유기체에서 대부분의 ATP를 생성하는 전자 전달 사슬의 최종 전자 수용체"로 산소를 사용하여 혐기성 미생물보다 영양소로부터 더 많은 에너지를 생산합니다(Betsy & Keogh, 2005, p.104). 통성 미생물은 산소를 사용할 수 있지만 산소를 사용할 수 없는 경우 발효 또는 혐기성 호흡을 사용하지 않고 이동할 수도 있습니다(Betsy & Keogh, 2005). 첫 번째 작업에서 배양되는 미생물(Lactobacillus acidophilus 및 Staphylococcus epidermidis)은 절대 호기성입니다. 미생물은 온도가 이러한 변수 중 하나인 다양한 조건에서 성장할 수 있지만 환경에서 자주 접하는 유형은 상당히 따뜻한 온도에서 번성합니다. Lactobacillus acidophilus와 Staphylococcus epidermidis는 모두 중온균이라고 하는 이들의 예입니다. 극한의 온도(예: 급속 동결 또는 오토클레이브에서와 같이)는 더 적당한 온도 밖에서는 번식할 수 없기 때문에 미생물을 파괴하는 데 효과적입니다. 이 두 유기체의 성장은 섭씨 25도에서 40도 사이를 유지함으로써 최적화될 것입니다(Betsy.

Candida Tropicalis에 대한 Star Anise(Illicium Verum)의 항진균 활성

. 칸디다 트로피칼리스에 대한 스타 아니스(Illicium verum)의 항진균 활성 _______________ 세부 시 Talamban 국립 고등학교 Talamban 학부에 제출된 조사 프로젝트 _______________ 연구 요구 사항의 부분적 이행 I _______________ Queenibel S. Arriesgado Kristine Jane A. Dominique Fatima G. Cabansay Jobelyn B. Cogtas Mary Rose A. Telamo 2014년 6월 승인 시트 "항균 활동 of STAR ANISE SEEDS(Illicium verum) to Candida tropicalis"라는 제목의 조사 프로젝트, 작성 및 제출: Queenibel S. Arriesgado, Kristine Jane A Borces, Dominique Fatima G.Cabansay, Jobelyn B. Cogtas, Mary Rose A. Telamo는 Reasearch I에 대한 요구 사항을 부분적으로 충족하여 구두 시험에 대한 수락 및 승인을 위해 검사되었습니다. 연구 자문 위원회 MA. 제시카 N. 아바욘, 에드. D. 의장 CELIA C. GEPITULAN, M. Ed. 조셀린 C. 부타나스, M. Ed. 고문 회원 CELIA C. GEPITULAN, M. Ed. FARAH C. CENIZA 회원 회원 -------------------------------------------- ----- 구술 시험 위원회의 승인을 받은 심사관 패널.

해양 곰팡이 리뷰

. 해양 균류학: 병원체 및 2차 대사 산물의 개요 소개 및 역사 해양 균류학의 황금기는 1960년에서 1990년 사이에 약 500종의 해양 절대 균류 대부분의 연구 및 발견과 함께 발생했습니다. 1980년에서 2000년 사이에 많은 연구가 수행되었으며 이 30년 동안 현재 알려진 해양 곰팡이 종의 거의 절반이 보고되었습니다(Jones et al. 2009 Jones, 2011). 즉, 해양 균류는 해양 식물, 동물 및 기타 미생물에 비해 광범위하게 연구되고 평가되지 않고 해양 생물다양성 및 생태학 교과서에서 생략되거나 간략하게 언급됩니다(Jones and Pang, 2012). 해양 균류의 분지학은 현재 유동적인 상태에 있으며, 중합효소 연쇄 반응을 통한 DNA 및 RNA 분석과 같은 분자 기술로 새로운 분류군이 발견되고 겔 전기영동이 구현됩니다(Ald et al 2005). 난균류와 같은 균류 유사 유기체는 균류가 아니지만 유사한 기능을 수행하기 때문에 해양 균류학자들이 종종 연구하고 있으며 최근까지 대부분은 형태학적 유사성에 따라 균류로 분류되었습니다(Jones, 2011). 이러한 균류 유사 유기체는 진핵생물, 종속영양생물, 유주자이며 키틴 함유 세포벽을 가지며 균류와 유사한 수명 주기를 가지고 있습니다(Neuhauser et al. 2012). 일반적으로 육상 또는 민물 종은 활동적인 생태학적 특성으로 인해 해양 균류 그룹에 통성 종으로 포함됩니다.